Preview

Инфекция и иммунитет

Расширенный поиск

ВЗАИМОДЕЙСТВИЕ НЕЙТРОФИЛОВ, ПРЕДОБРАБОТАННЫХ ГОРМОНАМИ, С БИОПЛЕНКАМИ КОММЕНСАЛЬНОГО И УРОПАТОГЕННОГО ШТАММОВ ESCHERICHIA COLI IN VITRO

https://doi.org/10.15789/2220-7619-IVI-1146

Полный текст:

Аннотация

Цель работы – изучить взаимодействие нейтрофилов, предобработанных хорионическим гонадотропином, эстриолом, кисспептином, лептином и грелином, с биопленками комменсального и уропатогенного штаммов Escherichia coli. Нейтрофилы периферической крови здоровых небеременных женщин I фазы менструального цикла (n=8) культивировали в течение часа с гормонами в концентрации, соответствующей уровню I и III триместра беременности. Взаимодействие нейтрофилов с биопленками комменсального E. coli TG1 и уропатогенного E. coli DL82 (UPEС) штаммов оценивали после часового контакта. Биомасса биопленки штаммов, активность миелопероксидазы и катепсина G оценивалась спектрофотометрически на мультипланшетном ридере Synergy H1 TM («BioTec», США). Установлено, что предобработка нейтрофилов хорионическим гонадотропином (10; 100 МЕ/мл), эстриолом (2; 20 нг/мл) и лептином (10 нг/мл) усиливала способность нейтрофилов разрушать опсонизированную биопленку только у комменсального штамма, не влияя на биопленку UPEС. Биомасса неопсонизированной биопленки комменсального E. coli TG1 снижалась после взаимодействия с нейтрофилами, предобработанными эстриолом (2 нг/мл), кисспептином (9,6 пМ) и грелином  (0,83 нг/мл). Для UPEС только при действии на нейтрофилы хорионического гонадотропина (10 МЕ/мл) отмечено большее разрушение неопсонизированной биопленки как по сравнению с контролем, так и по сравнению с концентрацией гормона 100 МЕ/мл. Секреция миелопероксидазы повышалась при взаимодействии UPEС c нейтрофилами, предобработанными эстриолом в концентрации 2 нг/мл. При сравнении двух штаммов отмечено, что хорионический гонадотропин (10 МЕ/мл) и эстриол (20 нг/мл) усиливали активность миелопероксидазы нейтрофилов после взаимодействия с биопленками UPEС в большей степени по сравнению с биопленками E. coli TG1. Гормоны, эстриол (20 нг/мл) и кисспептин (9 пМ), снижали активность катепсина G нейтрофилов при взаимодействии с биопленками UPEС.

Об авторах

И. Л. Масленникова
Институт экологии и генетики микроорганизмов УрО РАН
Россия
к.б.н., старший научный сотрудник, Лаборатория иммунорегуляции


И. В. Некрасова
Институт экологии и генетики микроорганизмов УрО РАН
Россия
к.б.н., научный сотредник, Лаборатория иммунорегуляции


Е. Г. Орлова
Институт экологии и генетики микроорганизмов УрО РАН
Россия
д.б.н., ведущий научный сотрудник, Лаборатория иммунорегуляции


О. Л. Горбунова
Институт экологии и генетики микроорганизмов УрО РАН
Россия
к.б.н., научный сотрудник, Лаборатория иммунорегуляции


С. В. Ширшев
Институт экологии и генетики микроорганизмов УрО РАН
Россия
д.м.н., профессор, заведующий лаборатории иммунорегуляции


Список литературы

1. Порядковый номер ссылки Авторы, название публикации и источника, где она опубликована, выходные данные ФИО, название публикации и источника на английском Полный интернет-адрес (URL) цитируемой статьи и/или

2. Горбунова О.Л., Ширшев С.В. Комплексное исследование иммуномодулирующей активности кисспептина // Российский иммунологический журнал. 2014. Т. 8, № 3. С. 288–290. Gorbunova O.L., Shirshev S.V. Integrated study immunomodulatory activity of kisspeptine. Rossijskij immunologicheskij zhurnal=Russian journal of immunology (Russia), 2014, vol. 8, no. 3. pp. 288–290. (In Russ.) https://elibrary.ru/item.asp?id=22813063

3. Данилов В.С., Зарубина А.П., Ерошников Г.Е., Соловьева Л.Н., Карташев Ф.В., Завильгельский Г.Б. Сенсорные биолюминесцентные системы на основе lux-оперонов разных видов люминесцентных бактерий // Вестник Московского университета. Серия 16: Биология. 2002. № 3. С. 20. Danilov V.S., Zarubina A.P., Eroshnicov G.E., Solov´eva L.N., Kartashev F.V., Zavilgelsky G.B. The bioluminescent sensor systems with lux-operons from various species of luminescent bacteria. Vestnik-Moskovskogo universiteta. Seriya 16: Biologiya = Moscow University Biological Sciences Bulletin, 2002, no. 3. pp. 20. (In Russ.) https://elibrary.ru/author_items.asp?authorid=55279

4. Куклина Е.М., Ширшев С.В. Регуляция окислительной активности нейтрофилов хорионическим гонадотропином. Роль женских половых стероидных гормонов // Известия Российской академии наук. Серия биологическая. 2003. № 4. С. 399–404. Kuklina E.M., Shirshev S.V. Regulation of oxidative activity of neutrophils by chorionic gonadotropin: the role of female steroid sex hormones. Izvestiya rossijskoj akademii nauk. Seriya biologicheskaya = Biology Bulletin, 2003, vol. 30, no. 4. pp. 325–329. https://elibrary.ru/item.asp?id=13437145 [doi: 10.1023/A:1024853604934]

5. Некрасова И. В., Ширшев С. В. Женские половые стероидные гормоны в регуляции ферментативной активности нейтрофилов // Доклады академии наук. 2013. Т. 453, № 6. С. 690–693. Nekrasova I.V., Shirshev S.V. Female sex steroid hormones in regulation of neutrophil enzymatic activity. Doklady akademii nauk = Doklady Biochemistry and Biophysics, 2013, vol. 453, no. 1. pp. 312-315. (In Russ.) https://elibrary.ru/download/elibrary_20885097_72914254.pdf[doi: 10.7868/S0869565213360231]

6. Орлова Е.Г., Ширшев С.В. модуляция лептином функциональной активности нейтрофилов и моноцитов периферической крови женщин // Цитокины и воспаление. 2007. Т. 6, № 3. С. 44–48. Orlova E.G., Shirshev S.V. Modulation of women''s peripheral blood neutrophils and monocytes functional activity with leptin. Citokiny i vospalenie = Cytokines and Inflamation, 2007, vol. 6, no. 3. pp. 44–48. (In Russ.) https://elibrary.ru/item.asp?id=21362733

7. Чеботарь И.В., Маянский А.Н., Кончакова Е.Д. Нейтрофилы и бактериальные биопленки: диалектика взаимоотношений. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2013. № 6. С. 105–112. Chebotar I.V., Mayansky A.N., Konchakova E.D. Neutrophils and bacterial biofilms: dialectics of relationship. Zhurnal mikrobiologii ehpidemiologii i immunobiologii = Journal of microbiology, epidemiology and immunology (Russia). 2013, no. 5, pp. 105–112. (In Russ.) https://elibrary.ru/item.asp?id=23087834

8. Шипицына Е. В., Хуснутдинова Т. А., Савичева А. М., Айвазян Т. А. Инфекции мочевыводящих путей в акушерстве и гинекологии // Журнал акушерства и женских болезней. 2015. № 6. С. 91–104. Shipitsyna E.V., Khusnutdinova T.A., Savicheva A.M., Ayvazyan T.A. Urinary tract infections in obstetrics and gynecology. Zhurnal akusherstva i zhenskih boleznej = Journal of obstetrics and women's diseases (Russia). 2015, no. 6, pp. 91–104. (In Russ.) https://elibrary.ru/download/elibrary_25904225_47115609.pdf

9. Ширшев С.В., Масленникова И.Л., Некрасова И.В. Влияние секретируемых метаболитов Escherichia coli на функциональную активность нейтрофилов человека на фоне действия эстриола // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2014. № 5. С. 65–70. Shirshev S.V., Maslennikova I.L., Nekrasova I.V. Effect of Escherichia coli secreted metabolites on functional activity of human neutrophils against the background of estriol effect. Zhurnal mikrobiologii ehpidemiologii i immunobiologii = Journal of microbiology, epidemiology and immunology (Russia), 2014, no 5, pp. 65–70. (In Russ) https://elibrary.ru/item.asp?id=23947254

10. Ширшев С.В., Орлова Е.Г., Сабанцева Ю.П. Роль грелина в регуляции фагоцитарной и микробицидной активности нейтрофилов // Вестник Пермского университета. Серия: Биология. 2015. № 4. С. 378–381. Shirshev S.V., Orlova E.G., Sabantseva Y.P. Roles of the ghrelin in regulation of phagocytic and oxidative activity of neutrophils. Vestnik Permskogo universiteta. Seriya: Biologiya = Perm University Biological Science Bulletin (Russia), 2015, no. 4. pp. 378–381. (In Russ.) https://elibrary.ru/download/elibrary_25010780_11824777.pdf

11. Cole L.A. hCG, the wonder of today's science. Reprod. Biol. Endocrinol., 2012, vol. 10, no. 24. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3351023/ [doi: 10.1186/1477-7827-10-24]

12. Coote J.G. The RTX toxins of Gram-negative bacterial pathogens: modulators of the host immune system. Rev. Med. Microbiol., 1996, vol. 7, no. 1, pp. 53–62. - https://www.researchgate.net/publication/232179153_The_RTX_toxins_of_Gram-negative_bacterial_pathogens_modulators_of_the_host_immune_system [doi: 10.1097/00013542-199601000-00006]

13. Dapunt U., Hänsch G.M., Arciola C.R. Innate Immune Response in Implant-Associated Infections: Neutrophils against Biofilms. Materials (Basel), 2016, vol. 9, no. 5, pii: E387. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5503022/ [doi: 10.3390/ma9050387]

14. Donlan R.M. Biofilm formation: a clinically relevant microbiological process. Clin. Infect. Dis, 2001, vol. 33, no. 8, pp.1387–1392. https://academic.oup.com/cid/article/33/8/1387/347551 [doi: 10.1086/322972]

15. Eberly A.R., Floyd K.A., Beebout C.J., Colling S.J., Fitzgerald M.J., Stratton C.W., Schmitz J.E., Hadjifrangiskou M. Biofilm Formation by Uropathogenic Escherichia coli Is Favored under Oxygen Conditions That Mimic the Bladder Environment. Int. J. Mol. Sci., 2017, vol. 18, no. 10. pii: E2077. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5666759/ [doi: 10.3390/ijms18102077]

16. Fattahi S., Kafil H.S., Nahai M.R., Asgharzadeh M., Nori R., Aghazadeh M. Relationship of biofilm formation and different virulence genes in uropathogenic Escherichia coli isolates from Northwest Iran. GMS Hyg. Infect. Control, 2015, vol. 10, Doc11 - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4512245/ [. doi: 10.3205/dgkh000254]

17. Fuglsang J., Skjaerbaek C., Espelund U., Frystyk J., Fisker S., Flyvbjerg A., Ovesen P. Ghrelin and its relationship to growth hormones during normal pregnancy. Clin. Endocrinol. (Oxf), 2005, vol. 62, no. 5, pp. 554–559. - https://onlinelibrary.wiley.com/doi/full/10.1111/j.1365-2265.2005.02257.x [doi.org/10.1111/j.1365-2265.2005.02257.x]

18. Gajewski M., Rzodkiewicz P., Gajewska J., Wojtecka-Łukasik E. The effect of leptin on the respiratory burst of human neutrophils cultured in synovial fluid. Reumatologia, 2015, vol. 53, no. 1, pp. 21–25. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4847311/ [doi: 10.5114/reum.2015.50553]

19. Gargan R.A., Brumfitt W., Hamilton-Miller J.M. Pre-opsonisation of Escherichia coli induces resistance to neutrophil killing in serum and urine: relationship to growth phase. J. Med. Microbiol., 1991, vol. 35, no. 1, pp. 12–17. - http://www.microbiologyresearch.org/docserver/fulltext/jmm/35/1/medmicro-35-1-12.pdf?expires=1543572718&id=id&accname=guest&checksum=88F7D3C47AF0AC94D724BB1DCB01832C

20. Hall-Stoodley L., Costerton J.W., Stoodley P. Bacterial biofilms: from the natural environment to infectious diseases. Nat. Rev. Microbiol., 2004, vol. 2, no. 2, pp. 95–108. - https://www.nature.com/articles/nrmicro821

21. Hardie L., Trayhurn P., Abramovich D., Fowler P. Circulating leptin in women: a longitudinal study in the menstrual cycle and during pregnancy. Clin. Endocrinol. (Oxf)., 1997, vol. 47, no. 1, pp. 101–106. - https://onlinelibrary.wiley.com/doi/abs/10.1046/j.1365-2265.1997.2441017.x [doi.org/10.1046/j.1365-2265.1997.2441017.x]

22. Hashemizadeh Z., Kalantar-Neyestanaki D., Mansouri S. Association between virulence profile, biofilm formation and phylogenetic groups of Escherichia coli causing urinary tract infection and the commensal gut microbiota: A comparative analysis. Microb. Pathog., 2017, vol. 110, pp. 540–545. - https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S088240101730685X?via%3Dihub [doi: 10.1016/j.micpath.2017.07.046]

23. Hattori N. Expression, regulation and biological actions of growth hormone (GH) and ghrelin in the immune system. Growth Horm. IGF Res., 2009, vol. 19, no. 3, pp. 187–97. - https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S1096637408001457?via%3Dihub [doi: 10.1016/j.ghir.2008.12.001]

24. Hirschfeld J. Dynamic interactions of neutrophils and biofilms. J. Oral. Microbiol, 2014, vol. 17, no. 6, pp. 26102. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4270880/ [doi: 10.3402/jom.v6.26102]

25. Horikoshi Y., Matsumoto H., Takatsu Y., Ohtaki T., Kitada C., Usuki S., Fujino M. Dramatic elevation of plasma metastin concentrations in human pregnancy: metastin as a novel placenta-derived hormone in humans. J. Clin. Endocrino.l Metab., 2003, vol. 88, no. 2, pp. 914–919. - https://academic.oup.com/jcem/article/88/2/914/2845392 [doi.org/10.1210/jc.2002-021235]

26. Jesaitis A.J., Franklin M.J., Berglund D., Sasaki M., Lord C.I., Bleazard J.B., Duffy J.E., Beyenal H., Lewandowski Z. Compromised host defense on Pseudomonas aeruginosa biofilms: characterization of neutrophil and biofilm interactions. J. Immunol., 2003, vol. 171, no. 8, pp. 4329–4339. - http://www.jimmunol.org/content/171/8/4329.long

27. [doi:org/10.4049/jimmunol.171.8.4329]

28. Kase N.G., Reyniak J.V. Endocrinology of pregnancy. Mt. Sinai J. Med., 1985, vol. 52, no. 1, pp. 11–34. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/2580232

29. Kazemnia A., Ahmadi M., Dilmaghani M. Antibiotic resistance pattern of different Escherichia coli phylogenetic groups isolated from human urinary tract infection and avian colibacillosis. Iran Biomed. J., 2014, vol. 18, no. 4, pp. 219–224. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4225061/ [doi:10.6091/ibj.1394.2014]

30. Khan M.A., Philip L.M., Cheung G., Vadakepeedika S., Grasemann H., Sweezey N., Palaniyar N. Regulating NETosis: Increasing pH Promotes NADPH Oxidase-Dependent NETosis. Front. Med. (Lausanne), 2018, vol. 5, pp. 19. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5816902/ [doi: 10.3389/fmed.2018.00019]

31. Koca С., Şahin Kavakli H., Alici O. Immunomodulatory role of leptin treatment in experimental sepsis caused by gram negative bacteria. Turk. J. Med. Sci., 2011, vol. 41, no. 2, pp. 251–258. - https://www.researchgate.net/publication/228494539_Immunomodulatory_role_of_leptin_treatment_in_experimental_sepsis_caused_by_gram_negative_bacteria [doi: 10.3906/sag-1009-1109]

32. Lassek C., Burghartz M., Chaves-Moreno D., Otto A., Hentschker C., Fuchs S., Bernhardt J., Jauregui R., Neubauer R., Becher D., Pieper D.H., Jahn M., Jahn D., Riedel K. A metaproteomics approach to elucidate host and pathogen protein expression during catheter-associated urinary tract infections (CAUTIs). Mol. Cell Proteomics, 2015, vol. 14, no. 4, pp. 989–1008. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4390275/ [doi: 10.1074/mcp.M114.043463]

33. Lee J.H., Subhadra B., Son Y.J., Kim D.H., Park H.S., Kim J.M., Koo S.H., Oh M.H., Kim H.J., Choi C.H. Phylogenetic group distributions, virulence factors and antimicrobial resistance properties of uropathogenic Escherichia coli strains isolated from patients with urinary tract infections in South Korea. Lett. Appl. Microbiol., 2016, vol. 62, no. 1, pp. 84–90. - https://onlinelibrary.wiley.com/doi/abs/10.1111/lam.12517 [doi: 10.1111/lam.12517]

34. Li B., Zeng M., Zheng H., Huang C., He W., Lu G., Li X., Chen Y., Xie R. Effects of ghrelin on the apoptosis of human neutrophils in vitro. Int. J. Mol. Med., 2016, vol. 38, no. 3, pp. 794–802. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4990324/ [doi: 10.3892/ijmm.2016.2668]

35. Lichtenberger P., Hooton T.M. Antimicrobial prophylaxis in women with recurrent urinary tract infections. Int. J. Antimicrob. Agent, 2011, vol. 38, pp. 36–41. - https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0924857911003645?via%3Dihub [doi: 10.1016/j.ijantimicag.2011.09.005]

36. Lüthje P., Brauner A. Virulence factors of uropathogenic E. coli and their interaction with the host. Adv. Microb. Physiol., 2014, vol. 65, pp. 337–372. - https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0065291114000071?via%3Dihub [doi: 10.1016/bs.ampbs.2014.08.006]

37. Lüthje P., Brauner H., Ramos N.L., Ovregaard A., Gläser R., Hirschberg A.L., Aspenström P., Brauner A. Estrogen supports urothelial defense mechanisms. Sci. Transl. Med., 2013, vol. 5, no. 190, pp. 190ra80. - http://stm.sciencemag.org/content/5/190/190ra80.long [doi: 10.1126/scitranslmed.3005574]

38. Mann R., Mediati D.G., Duggin I.G., Harry E.J., Bottomley A.L. Metabolic Adaptations of Uropathogenic E. coli in the Urinary Tract. Front. Cell Infect. Microbiol., 2017, vol. 7, pp. 241. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5463501/ [doi: 10.3389/fcimb.2017.00241]

39. Matuszkiewicz-Rowińska J., Małyszko J., Wieliczko M. Urinary tract infections in pregnancy: old and new unresolved diagnostic and therapeutic problems. Arch. Med. Sci., 2015, vol. 11, no. 1, pp. 67–77. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4379362/ [doi: 10.5114/aoms.2013.39202]

40. Molero L., García-Durán M., Diaz-Recasens J., Rico L., Casado S., López-Farré A. Expression of estrogen receptor subtypes and neuronal nitric oxide synthase in neutrophils from women and men: regulation by estrogen. Cardiovasc. Res., 2002, vol. 56, no. 1, pp. 43–51. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Expression+of+estrogen+receptor+subtypes+and+neuronal+nitric+oxide+synthase+in+neutrophils+from+women+and+men%3A+regulation+by+estrogen

41. Ohtaki T., Shintani Y., Honda S., Matsumoto H., Hori A., Kanehashi K., Terao Y., Kumano S., Takatsu Y., Masuda Y., Ishibashi Y., Watanabe T., Asada M., Yamada T., Suenaga M., Kitada C., Usuki S., Kurokawa T., Onda H., Nishimura O., Fujino M. Metastasis suppressor gene KiSS-1 encodes peptide ligand of a G-protein-coupled receptor. Nature, 2001, vol. 411, no. 6837, pp. 613–617. - https://www.nature.com/articles/35079135

42. Oliveira F.A., Paludo K.S., Arend L.N., Farah S.M., Pedrosa F.O., Souza E.M., Surek M., Picheth G., Fadel-Picheth C.M. Virulence characteristics and antimicrobial susceptibility of uropathogenic Escherichia coli strains. Genet. Mol. Res., 2011, vol. 10, no. 4, pp. 4114–25. - https://www.geneticsmr.com/articles/1346 [ doi: 10.4238/2011]

43. Olson P.D., Hruska K.A., Hunstad D.A. Androgens Enhance Male Urinary Tract Infection Severity in a New Model. J. Am. Soc. Nephrol., 2016, vol. 27, no. 6, pp. 1625–1634. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4884108/ [doi: 10.1681/ASN.2015030327]

44. O`Toole G.F., Kaplan H.B., Kolter R. Biofilm formation as microbial development. Ann. Rev. Microbiol., 2000, vol. 54, pp. 49–79. - https://www.annualreviews.org/doi/full/10.1146/annurev.micro.54.1.49?url_ver=Z39.88-2003&rfr_id=ori%3Arid%3Acrossref.org&rfr_dat=cr_pub%3Dpubmed [doi.org/10.1146/annurev.micro.54.1.49]

45. Pham C.T., Ivanovich J.L., Raptis S.Z., Zehnbauer B., Ley T.J. Papillon-Lefe`vre syndrome: Correlating the molecular, cellular, and clinical consequences of cathepsin C/dipeptidyl peptidase I deficiency in humans. J. Immunol., 2004, vol. 173, no. 12, pp. 7277–7281. - http://www.jimmunol.org/content/173/12/7277.long [doi.org/10.4049/jimmunol.173.12.7277]

46. Phan Q.T., Sipka T., Gonzalez C., Levraud J.P., Lutfalla G., Nguyen-Chi M. Neutrophils use superoxide to control bacterial infection at a distance. PLoS Pathog., 2018, vol. 14, no. 7, pp. e1007157. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6049935/ [doi: 10.1371/journal.ppat.1007157]

47. Ramos N.L., Sekikubo M., Dzung D.T., Kosnopfel C., Kironde F., Mirembe F., Brauner A. Uropathogenic Escherichia coli isolates from pregnant women in different countries. J. Clin. Microbiol., 2012, vol. 50, no. 11, pp. 3569-74. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3486199/ [doi: 10.1128/JCM.01647-12]

48. Rosen D.A., Hooton T.M., Stamm W.E., Humphrey P.A., Hultgren S.J. Detection of intracellular bacterial communities in human urinary tract infection. PLoS Med. 2007, vol. 4, no. 12, pp. e329. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2140087/ [doi:10.1371/journal.pmed.0040329]

49. Schwab S., Jobin K., Kurts C. Urinary tract infection: recent insight into the evolutionary arms race between uropathogenic Escherichia coli and our immune system. Nephrol. Dial. Transplant., 2017, vol. 32, no. 12, pp. 1977–1983. - https://academic.oup.com/ndt/article/32/12/1977/3072152 [doi: 10.1093/ndt/gfx022]

50. Schwartz D.J., Kalas V., Pinkner J.S., Chen S.L., Spaulding C.N., Dodson K.W., Hultgren S.J. Positively selected FimH residues enhance virulence during urinary tract infection by altering FimH conformation. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A, 2013, vol. 110, no. 39, pp. 15530–15537. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3785778/ [doi: 10.1073/pnas.1315203110]

51. Shirai F., Kawaguchi M., Yutsudo M., Dohi Y. Human peripheral blood polymorphonuclear leukocytes at the ovulatory period are in an activated state. Mol. Cell Endocrinol., 2002, vol. 196, no. 1-2, pp. 21–28. - https://ac.els-cdn.com/S0303720702002289/1-s2.0-S0303720702002289-main.pdf?_tid=704b83e8-403d-4131-8f1b-653a4a6bf43c&acdnat=1543815989_06946f685719f5ddd195bd3cc15c78e2 [doi.org/10.1016/S0303-7207(02)00228-9]

52. Soto S.M., Smithson A., Martinez J.A., Horcajada J.P., Mensa J., Vila J. Biofilm formation in uropathogenic Escherichia coli strains: relationship with prostatitis, urovirulence factors and antimicrobial resistance. J. Urol., 2007, vol. 177, no. 1, pp. 365–368. - https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0022534706021987?via%3Dihub [doi.org/10.1016/j.juro.2006.08.081]

53. Stroh P., Günther F., Meyle E., Prior B., Wagner C., Hänsch G.M. Host defence against Staphylococcus aureus biofilms by polymorphonuclear neutrophils: oxygen radical production but not phagocytosis depends on opsonisation with immunoglobulin G. Immunobiology, 2011, vol. 216, no. 3. pp. 351–357. - https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0171298510001439?via%3Dihub [doi: 10.1016/j.imbio.2010.07.009]

54. Sun Z., Dragon S., Becker A., Gounni A.S. Leptin inhibits neutrophil apoptosis in children via ERK/NF-κB-dependent pathways. PLoS One, 2013, vol. 8, no. 1, pp. e55249. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3561393/ [doi: 10.1371/journal.pone.0055249]

55. Ujioka T., Matsukawa A., Tanaka N., Matsuura K., Yoshinaga M., Okamura H. Interleukin-8 as an essential factor in the human chorionic gonadotropin-induced rabbit ovulatory process: interleukin-8 induces neutrophil accumulation and activation in ovulation. Biol. Reprod., 1998, vol. 58, no. 2, pp. 526–530. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=interleukin-8%20as%20an%20essential%20factor%20in%20the%20human%20chorionic%20gonadotropin-induced%20rabbit%20ovulatory%20process%20interleukin-8%20induced%20neutrophil%20accumulation%20and%20activation%20in%20ovulation&cmd=correctspelling

56. van Gennip M., Christensen L.D., Alhede M., Qvortrup K., Jensen P.Ø., Høiby N., Givskov M., Bjarnsholt T. Interactions between polymorphonuclear leukocytes and Pseudomonas aeruginosa biofilms on silicone implants in vivo. Infect. Immun., 2012, vol. 80, no. 8, pp. 2601-2607. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3434577/ [doi: 10.1128/IAI.06215-11]

57. Vejborg R.M., Hancock V., Schembri M.A., Klemm P. Comparative genomics of Escherichia coli strains causing urinary tract infections. Appl. Environ. Microbiol, 2011, vol. 77, no. 10, pp. 3268–78. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3126446/ [doi: 10.1128/AEM.02970-10]

58. Vethanayagam R.R., Almyroudis N.G., Grimm M.J., Lewandowski D.C., Pham C.T., Blackwell T.S., Petraitiene R., Petraitis V., Walsh T.J., Urban C.F., Segal B.H. Role of NADPH oxidase versus neutrophil proteases in antimicrobial host defense. PLoS One, 2011, vol. 6, no. 12, pp. e28149. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3233573/ [doi: 10.1371/journal.pone.0028149]

59. Yang W.L., Ma G., Zhou M., Aziz M., Yen H.T., Mavropoulos S., Ojamaa K., Wang P. Combined Administration of Human Ghrelin and Human Growth Hormone Attenuates Organ Injury and Improves Survival in Aged Septic Rats. Mol. Med., 2016, vol. 22, pp. 124–135. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5004717/ [doi: 10.2119/molmed.2015.00255]

60. Yu Y., Sikorski P., Bowman-Gholston C., Cacciabeve N., Nelson K.E., Pieper R. Diagnosing inflammation and infection in the urinary system via proteomics. J. Transl. Med., 2015, vol. 13, pp. 111. doi: 10.1186/s12967-015-0475-3 - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4396075/ [doi: 10.1186/s12967-015-0475-3]


Дополнительные файлы

1. Метаданные
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (14KB)    
Метаданные
2. Подписи авторов
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (966KB)    
Метаданные
3. Титульный лист
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (16KB)    
Метаданные
4. Резюме
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (24KB)    
Метаданные
5. Таблица 1. Биомасса биопленки комменсального E. coli TG1 и уропатогенного E. coli DL82 штаммов после взаимодействия с нейтрофилами, предобработанных гормонами, in vitro
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (16KB)    
Метаданные
6. Таблица 2. Микробицидный потенциал нейтрофилов, предобработанных гормонами, при взаимодействии с биопленками комменсального E. coli TG1 и уропатогенного E. coli DL82 штаммов in vitro
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (16KB)    
Метаданные

Для цитирования:


Масленникова И.Л., Некрасова И.В., Орлова Е.Г., Горбунова О.Л., Ширшев С.В. ВЗАИМОДЕЙСТВИЕ НЕЙТРОФИЛОВ, ПРЕДОБРАБОТАННЫХ ГОРМОНАМИ, С БИОПЛЕНКАМИ КОММЕНСАЛЬНОГО И УРОПАТОГЕННОГО ШТАММОВ ESCHERICHIA COLI IN VITRO. Инфекция и иммунитет. 2019;. https://doi.org/10.15789/2220-7619-IVI-1146

For citation:


Maslennikova I.L., Nekrasova I.V., Orlova E.G., Gorbunova O.L., Shirshev S.V. IN VITRO INTERACTION OF HORMONE-CONDITIONED NEUTROPHILS WITH COMMENSAL AND UROPATHOGENIC ESCHERICHIA COLI BIOFILMS. Russian Journal of Infection and Immunity. 2019;. (In Russ.) https://doi.org/10.15789/2220-7619-IVI-1146

Просмотров: 23


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2220-7619 (Print)
ISSN 2313-7398 (Online)