Preview

Инфекция и иммунитет

Расширенный поиск

РЕЦЕПТОРЫ ВРОЖДЕННОГО ИММУНИТЕТА В РАЗВИТИИ ИНФЕКЦИИ, ВЫЗВАННОЙ MYCOBACTERIUM TUBERCULOSIS

https://doi.org/10.15789/2220-7619-ROI-1169

Полный текст:

Аннотация

Согласно данным Всемирной организации здравоохранения, ежегодно во всем мире регистрируется свыше 10 млн новых случаев туберкулеза. В Российской Федерации, по данным Федеральной службы государственной статистики, в 2017 году на 100 000 населения зарегистрировано 109,8 случаев активного туберкулеза, из которых 41,3% имели запущенную форму заболевания. На современном этапе развития медицинской науки как отечественные, так и зарубежные исследователи отмечают, что механизмы врожденного иммунитета при туберкулезе до конца не изучены и требуют мультидисциплинарного подхода в проведении исследований в данной области.

В обзоре приводятся данные о роли рецепторов врожденного иммунитета в распознавании патоген-ассоциированных молекулярных паттернов, присущих Mycobacterium tuberculosis, в продукции иммунорегуляторных цитокинов и в активации сигнальных путей, играющих критическую роль в регуляции некроптоза, апоптоза и аутофагии инфицированных макрофагов. Рассматривается значение факторов врожденного мукозального иммунитета в реализации иммунного ответа на M. tuberculosis. Описано участие Толл-подобных рецепторов, скавенджер-рецепторов, маннозного рецептора, DC-SIGN и других в развитии иммунитета против M. tuberculosis. Представлены данные о полиморфных вариантах генов врожденного иммунитета, формирующих предрасположенность к туберкулезу и оказывающих влияние на характер его течения.  

Об авторах

А. В. Лапштаева
ФГБОУ ВО «Мордовский государственный университет им. Н.П.Огарева».
Россия
ассистент кафедры иммунологии, микробиологии и вирусологии


Е. А. Живечкова
ФГБОУ ВО «Мордовский государственный университет им. Н.П.Огарева».
Россия
студентка Медицинского института


Е. А. Живечкова
ФГБОУ ВО «Мордовский государственный университет им. Н.П.Огарева».
Россия
студентка Медицинского института


И. В. Сычев
ФГБОУ ВО «Мордовский государственный университет им. Н.П.Огарева».
Россия
аспирант Медицинского института


И. В. Сычев
ФГБОУ ВО «Мордовский государственный университет им. Н.П.Огарева».
Россия
аспирант Медицинского института


И. В. Евсегнеева
ФГАОУ ВО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России.
Россия
д.м.н., доцент, профессор кафедры клинической иммунологии и аллергологии


И. В. Евсегнеева
ФГАОУ ВО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России.
Россия
д.м.н., доцент, профессор кафедры клинической иммунологии и аллергологии


В. В. Новиков
ФГАОУ ВО "Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет им. Н.И. Лобачевского"; ФБУН «Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной».
д.б.н, профессор, заведующий кафедрой молекулярной биологии и иммунологии ФГАОУ ВО "Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет им. Н.И. Лобачевского"; заведующий лабораторией иммунохимии ФБУН «Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной».


В. В. Новиков
ФГАОУ ВО "Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет им. Н.И. Лобачевского"; ФБУН «Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной».
д.б.н, профессор, заведующий кафедрой молекулярной биологии и иммунологии ФГАОУ ВО "Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет им. Н.И. Лобачевского"; заведующий лабораторией иммунохимии ФБУН «Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной».


Список литературы

1. Герасимов А.Н., Михеева И.В. Эпидемиологическая ситуация с туберкулезом в России – кажущееся благополучие и скрытые угрозы // Тихоокеанский медицинский журнал. 2018. Т. 3, №. 73. С. 75–78.

2. Звонкова С.Г., Огарков О.Б., Зоркальцева Е.Ю. Изучение особенностей полиморфизма генов DC-SIGN -336A/G, MCP1 -2518A/G, INFγ +874A/T и конституциональных типов у детей с туберкулезной инфекцией // Бюллетень Восточно-Сибирского научного центра Сибирского отделения Российской академии медицинских наук. 2011. Т.2, № 78. С. 198-200.

3. Малышев И.Ю., Лямина С.В., Шимшелашвили Ш.Л., Вассерман Е.Н. Функциональные ответы альвеолярных макрофагов, сурфактантный белок D и заболевания легких // Пульмонология. 2014. № 3. С. 101–107.

4. Синьков В.В., Огарков О.Б., Зоркальцева Е.Ю., Скворцова Р.Г., Савилов Е.Д., Воробьева Д.В., Корчина С.И., Жданов С.Н., Косенкова Д.В., Медведева Т.В. Полиморфизм генов DC-SIGN – 336A / G , MCP1 – 2518A / G , INF γ + 874A / T у больных легочным туберкулезом в Иркутской области // Сибирский медицинский журнал (Иркутск). 2009. Т. 7, № 90. С.30–33.

5. Astarie-Dequeker C., N’Diaye E.N., Cabec V. Le, Rittig M.G., Prandi J., Maridonneau-Parini I. The mannose receptor mediates uptake of pathogenic and nonpathogenic mycobacteria and bypasses bactericidal responses in human macrophages. Infect. Immun., 1999, vol. 67, no. 2, pp. 469–477.

6. Astarie-Dequeker C., Guyader L. Le, Malaga W., Seaphanh F.-K., Chalut C., Lopez A., Guilhot C. Phthiocerol dimycocerosates of M. tuberculosis participate in macrophage invasion by inducing changes in the organization of plasma membrane lipids. PLoS Pathog., 2009, vol. 5, no. 2, pp. e1000289. doi.org/10.1371/journal.ppat.1000289

7. Azad A.K., Torrelles J.B., Schlesinger L.S. Mutation in the DC-SIGN cytoplasmic triacidic cluster motif markedly attenuates receptor activity for phagocytosis and endocytosis of mannose-containing ligands by human myeloid cells. J. Leukoc. Biol., 2008, vol. 84, no. 6, pp. 1594–1603. doi:10.1189/jlb.0308192.

8. Azad A.K., Sadee W., Schlesinger L.S. Innate Immune Gene Polymorphisms in Tuberculosis. Infect. Immun., 2012, vol. 80, no. 10, pp. 3343-3359. doi:10.1128/IAI.00443-12.

9. Bandyopadhyay U., Chadha A., Gupta P., Tiwari B., Bhattacharyya K., Popli S., Raman R., Brahamachari V., Singh Y., Malhotra P., Natarajan K. Suppression of Toll-like receptor 2–mediated proinflammatory responses by Mycobacterium tuberculosis protein Rv3529c. J. Leukoc. Biol., 2017, vol. 102, no. 5, pp. 1249–1259. doi:10.1189/jlb.4A0217-042R.

10. Bao M., Yi Z., Fu Y. Activation of TLR7 Inhibition of Mycobacterium Tuberculosis Survival by Autophagy in RAW 264.7 Macrophages. J. Cell. Biochem., 2017, vol. 118, no. 12, pp. 4222–4229. doi: 10.1002/jcb.26072.

11. Barreiro L.B., Neyrolles O., Babb C.L., Tailleux L., Quach H., McElreavey K., Helden P.D. Van, Hoal E.G., Gicquel B., Quintana-Murci L. Promoter variation in the DC-SIGN-encoding gene CD209 is associated with tuberculosis. PLoS Med., 2006, vol. 3, no. 2, pp. e20. doi:10.1371/journal.pmed.0030020.

12. Beharka A.A., Gaynor C.D., Kang B.K., Voelker D.R., McCormack F.X., Schlesinger L.S. Pulmonary surfactant protein A up-regulates activity of the mannose receptor, a pattern recognition receptor expressed on human macrophages. J. immunol., 2002, vol. 169, no. 7, pp. 3565–3573. doi:10.4049/jimmunol.169.7.3565.

13. Ben-Ali M., Barbouche M.-R., Bousnina S., Chabbou A., Dellagi K. Toll-like receptor 2 Arg677Trp polymorphism is associated with susceptibility to tuberculosis in Tunisian patients. Clin. diagnost. lab. immunol., 2004, vol. 11, no. 3, pp. 625–626. doi: 10.1128/CDLI.11.3.625-626.2004

14. Bharti D., Kumar A., Mahla R.S., Kumar S., Ingle H., Shankar H., Joshi B., Raut A.A., Kumar H. The role of TLR9 polymorphism in susceptibility to pulmonary tuberculosis. Immunogenetics, 2014, vol. 66, no. 12, pp. 675–681. doi.org/10.1007/s00251-014-0806-1.

15. Boily-Larouche G., Zijenah L.S., Mbizvo M., Ward B.J., Roger M. DC-SIGN and DC-SIGNR genetic diversity among different ethnic populations: Potential implications for pathogen recognition and disease susceptibility. Hum. Immunol., 2007, vol. 68, no. 6, pp. 523–530. doi:10.1016/j.humimm.2007.02.002.

16. Bowdish D.M.E., Sakamoto K., Kim M., Kroos M., Mukhopadhyay S., Leifer C.A., Tryggvason K., Gordon S., Russell D.G. MARCO , TLR2 , and CD14 Are Required for Macrophage Cytokine Responses to Mycobacterial Trehalose Dimycolate and Mycobacterium tuberculosis. PLoS Pathog., 2009, vol. 5, no. 6, pp. e1000474. doi:10.1371/journal.ppat.1000474.

17. Brooks M.N., Rajaram M.V.S., Azad A.K., Amer A.O., Valdivia-arenas M.A., Park J., Núñez G., Schlesinger L.S. NOD2 controls the nature of the inflammatory response and subsequent fate of Mycobacterium tuberculosis and M. bovis BCG in human macrophages. Cell. Microbiol., 2010, vol. 13, no. 3, pp. 402–418. doi:10.1111/j.1462-5822.2010.01544.x.

18. Capparelli R., Iannaccone M., Palumbo D., Medaglia C., Moscariello E., Russo A., Iannelli D. Role Played by Human Mannose-Binding Lectin Polymorphisms in Pulmonary Tuberculosis. J. Infect. Dis., 2009, vol. 199, no. 5, pp. 666–672. doi:10.1086/596658.

19. Ceylan E., Karkucak M., Coban H., Karadag M., Yakut T. Evaluation of TNF-alpha gene (G308A) and MBL2 gene codon 54 polymorphisms in Turkish patients with tuberculosis. J. Infect. Public Health, 2017, vol. 10, no. 6, pp. 774–777. doi:10.1016/j.jiph.2016.11.003.

20. Chieppa M., Bianchi G., Doni A., Prete A. Del, Sironi M., Laskarin G., Monti P., Piemonti L., Biondi A., Mantovani A., Introna M., Allavena P. Cross-Linking of the Mannose Receptor on Monocyte-Derived Dendritic Cells Activates an Anti-Inflammatory Immunosuppressive Program. J. Immunol., 2003, vol. 171, no. 9, pp. 4552–4560. doi:10.4049/jimmunol.171.9.4552.

21. Chroneos Z.C., Midde K., Sever-Chroneos Z., Jagannath C. Pulmonary surfactant and tuberculosis. Tuberculosis, 2009, vol. 89, no. suppl.1, pp. S10-14. doi:10.1016/S1472-9792(09)70005-8.

22. Chua J., Vergne I., Master S., Deretic V. A tale of two lipids: Mycobacterium tuberculosis phagosome maturation arrest. Curr. Opin. Microbiol., 2004, vol. 7, no. 1, pp. 71–77. doi:10.1016/j.mib.2003.12.011.

23. Coulombe F., Divangahi M., Veyrier F., Léséleuc L. De, Gleason J.L., Yang Y., Kelliher M.A., Pandey A.K., Sassetti C.M., Reed M.B., Behr M.A. Increased NOD2-mediated recognition of N -glycolyl muramyl dipeptide. J. Exp. Med., 2009, vol. 206, no. 8, pp. 1–8. doi:10.1084/jem.20081779.

24. Court N., Vasseur V., Vacher R., Fremond C., Shebzukhov Y., Yeremeev V.V., Maillet I., Nedospasov S.A., Gordon S., Fallon P.G., Suzuki H., Ryffel B., Quesniaux V.F.J. Partial redundancy of the pattern recognition receptors, scavenger receptors, and C-type lectins for the long-term control of Mycobacterium tuberculosis infection. J. Immunol., 2010, vol. 184, no. 12, pp. 7057–7070. doi:10.4049/jimmunol.1000164.

25. Dalgic N., Tekin D., Kayaalti Z., Soylemezoglu T., Cakir E., Kilic B., Kutlubay B., Sancar M., Odabasi M. Arg753Gln polymorphism of the human Toll-like receptor 2 gene from infection to disease in pediatric tuberculosis. Hum. Immunol., 2011, vol. 72, no. 5, pp. 440–445. doi:10.1016/j.hummim.2011.02.001.

26. DeFife K.M., Jenney C.R., McNally A.K., Colton E., Anderson J.M. Interleukin-13 induces human monocyte/macrophage fusion and macrophage mannose receptor expression. J. Immunol., 1997, vol. 158, no. 7, pp. 3385–90.

27. Dodd C.E., Pyle C.J., Glowinski R., Rajaram M.V.S., Schlesinger L.S. CD36-mediated uptake of surfactant lipids by human macrophages promotes intracellular growth of Mycobacterium tuberculosis. J. Immunol., 2016, vol. 197, no. 12, pp. 4727–4735. doi:10.4049/jimmunol.1600856.

28. Enomoto Y., Hagiwara E., Komatsu S., Nishihira R., Baba T., Ogura T. Comparison of biomarkers of pulmonary tuberculosis activity --serum surfactant proteins A and D, KL-6, C-reactive protein, and erythrocyte sedimentation rate. Kekkaku : [Tuberculosis]., 2014, vol. 89, no. 7, p. 637—642.

29. Ferguson J.S., Martin J.L., Azad A.K., McCarthy T.R., Kang P.B., Voelker D.R., Crouch E.C., Schlesinger L.S. Surfactant protein D increases fusion of Mycobacterium tuberculosis- containing phagosomes with lysosomes in human macrophages. Infect. Immun., 2006, vol. 74, no. 12, pp. 7005–7009. doi:10.1128/IAI.01402-06.

30. Figdor C.G., Kooyk van Y., Adema G.J. C-type lectin receptors on dendritic cells and langerhans cells. Nat. Rev. Immunol., 2002, vol. 2, no. 2, pp. 77–84. doi:10.1038/nri723.

31. Floros J., Lin H., García A., Salazar M.A., Guo X., DiAngelo S., Montaño M., Luo J., Pardo A., Selman M. Surfactant protein genetic marker alleles identify a subgroup of tuberculosis in a Mexican population. J. Infect. Dis., 2000, vol. 182, no. 5, pp. 1473–1478. doi:10.1086/315866.

32. Fratti R.A., Chua J., Vergne I., Deretic V. Mycobacterium tuberculosis glycosylated phosphatidylinositol causes phagosome maturation arrest. Proc. Nati. Acad. Sci., 2003, vol. 100, no. 9, pp. 5437–5442. doi:10.1073/pnas.0737613100.

33. Fremond C.M., Yeremeev V., Nicolle D.M., Jacobs M., Quesniaux V.F., Ryffel B. Fatal Mycobacterium tuberculosis infection despite adaptive immune response in the absence of MyD88. J. Clin. Invest., 2004, vol. 114, no. 12, pp. 1790–1799. doi: 10.1172/JCI21027.

34. Garred P., Richter C., Andersen Å.B., Madsen H.O., Mtoni I., Svejgaard A., Shao J. Mannan-binding lectin in the sub-Saharan HIV and tuberculosis epidemics. Scand. J. Immunol., 1997, vol. 46, no. 2, pp. 204–208.

35. Geijtenbeek T.B.H., Vliet S.J. van, Koppel E.A., Sanchez-Hernandez M., Vandenbroucke-Grauls C.M.J.E., Appelmelk B., Kooyk van Y. Mycobacteria Target DC-SIGN to Suppress Dendritic Cell Function. J. Exp. Med., 2003, vol. 197, no. 1, pp. 7–17. doi:10.1084/jem.20021229.

36. Geissmann F., Manz M.G., Jung S., Sieweke M.H., Merad M., Ley K. Development of monocytes, macrophages, and dendritic cells. Science, 2010, vol. 327, no. 5966, pp. 656–661. doi:10.1126/science.1178331.

37. Gomez L.M., Anaya J.M., Sierra-Filardi E., Cadena J., Corbi A., Martin J. Analysis of DC-SIGN (CD209) Functional Variants in Patients with Tuberculosis. Hum. Immunol., 2006, vol. 67, no. 10, pp. 808–811. doi:10.1016/j.humimm.2006.07.003.

38. Gupta D., Sharma S., Singhal J., Satsangi A.T., Antony C., Natarajan K. Suppression of TLR2-induced IL-12, reactive oxygen species, and inducible nitric oxide synthase expression by Mycobacterium tuberculosis antigens expressed inside macrophages during the course of infection. J. Immunol., 2010, vol. 184, no. 10, pp. 5444–5455. doi.org/10.4049/jimmunol.0903283.

39. Guzel A., Karadag A., Okuyucu A., Alacam H., Kucuk Y. The evaluation of serum surfactant protein D (SP-D) levels as a biomarker of lung injury in tuberculosis and different lung diseases. Clin Lab., 2014, vol. 60, no. 7, pp. 1091–1098.

40. Harding C.V., Boom W.H. Regulation of antigen presentation by Mycobacterium tuberculosis: A role for Toll-like receptors. Nat. Rev. Microbiol., 2010, vol. 8, no. 4, pp. 296–307. doi:10.1038/nrmicro2321.

41. Harriff M.J., Cansler M.E., Toren K.G., Canfield E.T., Kwak S., Gold M.C., Lewinsohn D.M. Human Lung Epithelial Cells Contain Mycobacterium tuberculosis in a Late Endosomal Vacuole and Are Efficiently Recognized by CD8+ T Cells. PLoS One, 2014, vol. 9, no. 5, pp. e97515. doi:10.1371/journal.pone.0097515.

42. Härtel C., Rupp J., Hoegemann A., Bohler A., Spiegler J., Otte S. Von, Röder K., Schultz C., Göpel W. 159C > T CD14 genotype — Functional effects on innate immune responses in term neonates. Hum. Immunol., 2008, pp. 338–343. doi:10.1016/j.humimm.2008.04.011.

43. Hawkes M., Li X., Crockett M., Diassiti A., Finney C., Min-Oo G., Liles W.C., Liu J., Kain K.C. CD36 deficiency attenuates experimental mycobacterial infection. BMC Infect. Dis., 2010, vol. 10, pp. 299. doi:10.1186/1471-2334-10-299.

44. Heldwein K.A., Fenton M.J. The role of Toll-like receptors in immunity against mycobacterial infection. Microbes Infect., 2002, vol. 4, no. 9, pp. 937–944. doi:10.1016/S1286-4579(02)01611-8.

45. Henning L.N., Azad A.K., Parsa K.V.L., Crowther J.E., Tridandapani S., Schlesinger L.S. Pulmonary surfactant protein a regulates TLR expression and activity in human macrophages. J. Immunol. 2008, vol. 180, no. 2, pp. 7847–7858. doi:10.4049/jimmunol.180.12.7847.

46. Hsieh M.H., Ou C.Y., Hsieh W.Y., Kao H.F., Lee S.W., Wang J., Wu L.S.H. Functional analysis of genetic variations in surfactant protein D in Mycobacterial infection and their association with tuberculosis. Front. Immunol., 2018, vol. 9. doi:10.3389/fimmu.2018.01543.

47. Jo E.K., Yang C.S., Choi C.H., Harding C.V. Intracellular signalling cascades regulating innate immune responses to Mycobacteria: Branching out from Toll-like receptors. Cell. Microbiol., 2007, vol. 9, no. 5, pp. 1087–1098. doi:10.1111/j.1462-5822.2007.00914.x.

48. Jo E.K. Mycobacterial interaction with innate receptors : TLRs , C-type lectins , and NLRs. Curr. Opin. Infect. Dis., 2008, vol. 21, no. 3, pp. 279–286. doi:10.1097/QCO.0b013e3282f88b5d.

49. Kang P.B., Azad A.K., Torrelles J.B., Kaufman T.M., Beharka A., Tibesar E., DesJardin L.E., Schlesinger L.S. The human macrophage mannose receptor directs Mycobacterium tuberculosis lipoarabinomannan-mediated phagosome biogenesis. J. Exp. Med., 2005, vol. 202, no. 7, pp. 987–999. doi:10.1084/jem.20051239.

50. Kawai T., Akira S. The role of pattern-recognition receptors in innate immunity: update on Toll-like receptors. Nat. Immunol., 2010, vol. 11, no. 5, pp. 373–384. doi:10.1038/ni.1863.

51. Khan N., Pahari S., Vidyarthi A., Aqdas M., Agrewala J.N. NOD-2 and TLR-4 signaling reinforces the efficacy of dendritic cells and reduces the dose of TB drugs against Mycobacterium tuberculosis. J. Innate Immun., 2016, vol. 8, no. 3, pp. 228–242. doi:10.1159/000439591.

52. Khan A., Mann L., Papanna R., Lyu M.-A., Singh C.R., Olson S., Eissa N.T., Cirillo J., Das G., Hunter R.L., Jagannath C. Mesenchymal stem cells internalize Mycobacterium tuberculosis through scavenger receptors and restrict bacterial growth through autophagy. Sci. Rep., 2017, vol. 7, no. 1. doi:10.1038/s41598-017-15290-z.

53. Konowich J., Gopalakrishnan A., Dietzold J., Verma S., Bhatt K., Rafi W., Salgame P. Divergent functions of TLR2 on hematopoietic and nonhematopoietic cells during chronic Mycobacterium tuberculosis infection. J. Immunol., 2016, vol. 198, no. 2, pp. 741–748. doi:10.4049/jimmunol.1601651.

54. Kusner D.J. Mechanisms of mycobacterial persistence in tuberculosis. Clin. Immunol., 2005, vol. 114, no. 3, pp. 239–247. doi:10.1016/j.clim.2004.07.016.

55. Lee M.S., Kim Y.J. Signaling pathways downstream of pattern-recognition receptors and their cross talk. Annu. Rev. Biochem., 2007, vol. 76, pp. 447–480. doi:10.1146/annurev.biochem.76.060605.122847.

56. Lee J.Y., Hwang E.H., Kim D.J., Oh S.M., Lee K.B., Shin S.J., Park J.H. The role of nucleotide-binding oligomerization domain 1 during cytokine production by macrophages in response to Mycobacterium tuberculosis infection. Immunobiology, 2016, vol. 221, no. 1, pp. 70–75. doi:10.1016/j.imbio.2015.07.020.

57. Li Y., Wang Y., Liu X. The role of airway epithelial cells in response to mycobacteria infection. Clin. Dev. Immunol., 2012, vol. 2012. doi:10.1155/2012/791392.

58. Zhao L., Liu K., Kong X., Tao Z., Wang Y., Liu Y. Association of polymorphisms in Toll-like receptors 4 and 9 with risk of pulmonary tuberculosis: a meta-analysis. Med. Sci. Monit., 2015, vol. 21, pp. 1097–1106. doi:10.12659/MSM.893755.

59. Liu P.T., Stenger S., Li H., Wenzel L., Tan B.H., Krutzik S.R., Ochoa M.T., Schauber J., Wu K., Meinken C., Kamen D.L., Wagner M., Bals R., Steinmeyer A., Zügel U., Gallo R.L , Eisenberg D., Hewison M., Hollis B.W., Adams J.S., Bloom B.R., Modlin R.L.Toll-like receptor triggering of a vitamin D-mediated human antimicrobial response. Science, 2006, vol. 311, no. 5768, pp. 1770–1773. doi:10.1126/science.1123933.

60. Lugo-Villarino G., Hudrisier D., Tanne A., Neyrolles O. C-type lectins with a sweet spot for Mycobacterium tuberculosis. Eur. J. Microbiol. Immunol., 2011, vol. 1, no. 1, pp. 25–40. doi:10.1556/EuJMI.1.2011.1.6.

61. Lugo-Villarino G., Troegeler A., Balboa L., Lastrucci C., Duval C., Mercier I., Bénard A., Capilla F., Saati T. Al, Poincloux R., Kondova I., Verreck F.A.W., Cougoule C., Maridonneau-Parini I., Sasiain M.D.C., Neyrolles O. The C-Type Lectin Receptor DC-SIGN Has an Anti-Inflammatory Role in Human M(IL-4) Macrophages in Response to Mycobacterium tuberculosis. Front.Immunol., 2018, vol. 9:1123. doi:10.3389/fimmu.2018.01123.

62. Lv J., He X., Wang H., Wang Z., Kelly G.T., Wang X., Chen Y., Wang T., Qian Z. TLR4-NOX2 axis regulates the phagocytosis and killing of Mycobacterium tuberculosis by macrophages. BMC Pulm. Med., 2017, vol. 17, no. 1, p. 194. doi:10.1186/s12890-017-0517-0.

63. Maes E., Coddeville B., Kremer L., Guérardel Y. Polysaccharide structural variability in mycobacteria: Identification and characterization of phosphorylated mannan and arabinomannan. Glycoconj. J., 2007, vol. 24, no. 8, pp. 439–448. doi:10.1007/s10719-007-9036-1.

64. Malik S., Greenwood C.M.T., Eguale T., Kifle A., Beyene J., Habte A., Tadesse A., Gebrexabher H., Britton S., Schurr E. Variants of the SFTPA1 and SFTPA2 genes and susceptibility to tuberculosis in Ethiopia. Hum. Genet., 2006, vol. 118, no. 6, pp. 752–759. doi:10.1007/s00439-005-0092-y.

65. Martinez-Pomares L., Reid D.M., Brown G.D., Taylor P.R., Stillion R.J., Linehan S.A., Zamze S., Gordon S., Wong S.Y.C. Analysis of mannose receptor regulation by IL-4, IL-10, and proteolytic processing using novel monoclonal antibodies. J. Leukocyte Biol., 2003, vol. 73, no. 5, pp. 604–613. doi:10.1189/jlb.0902450.

66. Matsushita M., Endo Y., Fujita T. Structural and functional overview of the lectin complement pathway: Its molecular basis and physiological implication. Arch. Immunol. Ther. Exp., 2013, vol. 61, no. 4, pp. 273–283. doi:10.1007/s00005-013-0229-y.

67. McBride A., Konowich J., Salgame P. Host defense and recruitment of Foxp3+ T regulatory cells to the lungs in chronic mycobacterium tuberculosis infection requires Toll-like receptor 2. PLoS Pathog., 2013, vol. 9, no. 6, pp. e1003397. doi:10.1371/journal.ppat.1003397.

68. McGreal E.P., Miller J.L., Gordon S. Ligand recognition by antigen-presenting cell C-type lectin receptors. Curr. Opin. Immunol., 2005, vol. 17, no. 1, pp. 18–24. doi:10.1016/j.coi.2004.12.001.

69. Mishra A.K., Driessen N.N., Appelmelk B.J., Besra G.S. Lipoarabinomannan and related glycoconjugates: structure, biogenesis and role in Mycobacterium tuberculosis physiology and host--pathogen interaction. FEMS Microbiol. Rev., 2011, vol. 35, no. 6, pp. 1126–1157.

70. Mittal M., Biswas S.K., Singh V., Arela N., Katoch V.M., Das R., Yadav V.S., Bajaj B., Mohanty K.K. Association of Toll like receptor 2 and 9 gene variants with pulmonary tuberculosis: exploration in a northern Indian population. Mol. Biol. Rep., 2018, vol. 45, no. 4, pp. 469–476. doi:10.1007/s11033-018-4182-z.

71. Nair V.R., Franco L.H., Zacharia V.M., Khan H.S., Stamm C.E., You W., Marciano D.K., Yagita H., Levine B., Shiloh M.U. Microfold Cells Actively Translocate Mycobacterium tuberculosis to Initiate Infection. Cell Rep., 2016, vol. 16, no. 5, pp. 1253–1258. doi:10.1016/j.celrep.2016.06.080.

72. Nigou J., Zelle-Rieser C., Gilleron M., Thurnher M., Puzo G. Mannosylated lipoarabinomannans inhibit IL-12 production by human dendritic cells: evidence for a negative signal delivered through the mannose receptor. J. Immunol., 2001, vol. 166, no. 12, pp. 7477–7485. doi:10.4049/jimmunol.166.12.7477.

73. de Oliveira L.R., Peresi E., Golim Mde A., Gatto M., Araújo Junior J.P., da Costa É.A., Ayres J.A., Fortes M.R., Calvi S.A. Analysis of Toll-like receptors, iNOS and cytokine profiles in patients with pulmonary tuberculosis during anti-tuberculosis treatment. PLoS One, 2014, vol. 9, no. 2, p. e88572. doi:10.1371/journal.pone.0088572.

74. Pattison M.J., Mitchell O., Flynn H.R., Chen C.-S., Yang H.-T., Ben-Addi H., Boeing S., Snijders A.P., Ley S.C. TLR and TNF-R1 activation of the MKK3/MKK6-p38α axis in macrophages is mediated by TPL-2 kinase. Biochem. J., 2016, vol. 473, no. 18, pp. 2845–2861. doi:10.1042/BCJ20160502.

75. Peterson P.K., Gekker G., Hu S., Sheng W.S., Anderson W.R., Ulevitch R.J., Tobias P.S., Gustafson K. V, Molitor T.W., Chao C.C. CD14 receptor-mediated uptake of nonopsonized Mycobacterium tuberculosis by human microglia. Infect. Immun., 1995, vol. 63, no. 4, pp. 1598–1602.

76. Platz J., Beisswenger C., Dalpke A., Koczulla R., Pinkenburg O., Vogelmeier C., Bals R. Microbial DNA induces a host defense reaction of human respiratory epithelial cells. J. Immunol., 2004, vol. 173, no. 2, pp. 1219–1223. doi: https://doi.org/10.4049/jimmunol.173.2.1219

77. Pöyhönen L., Kröger L., Huhtala H., Mäkinen J., Nuolivirta K., Mertsola J., He Q., Korppi M. Association of MBL2, TLR1, TLR2 and TLR6 polymorphisms with production of IFN-γ and IL-12 in BCG osteitis survivors R1. Pediatr. Infect. Dis. J., 2017, vol. 36, no. 2, pp. 135–139. doi: 10.1097/INF.0000000000001375

78. Prabha C., Rajashree P., Sulochana D.D. TLR2 and TLR4 expression on the immune cells of tuberculous pleural fluid. Immunol. Lett., 2008, vol. 117, no. 1, pp. 26–34. doi:10.1016/j.imlet.2007.11.002.

79. Queiroz A., Riley L.W. Bacterial immunostat: Mycobacterium tuberculosis lipids and their role in the host immune response. Rev. Soc. Bras. Med. Trop., 2017, vol. 50, no. 1, pp. 9–18. doi: 10.1590/0037-8682-0230-2016.

80. Quesniaux V., Fremond C., Jacobs M., Parida S., Nicolle D., Yeremeev V., Bihl F., Erard F., Botha T., Drennan M., Soler M.N., Le Bert M., Schnyder B., Ryffel B. Toll-like receptor pathways in the immune responses to mycobacteria. Microbes Infect., 2004, vol. 6, no. 10, pp. 946–959. doi:10.1016/j.micinf.2004.04.016.

81. Ramakrishna K., Premkumar K., Kabeerdoss J., John K.R. Impaired toll like receptor 9 response in pulmonary tuberculosis. Cytokine, 2017, vol. 90, pp. 38–43. doi:10.1016/j.cyto.2016.10.006.

82. Richardson E.T., Shukla S., Sweet D.R., Wearsch P.A., Tsichlis P.N., Boom W.H., Harding C. V. Toll-like receptor 2-dependent extracellular signal-regulated kinase signaling in Mycobacterium tuberculosis-infected macrophages drives anti-inflammatory responses and inhibits Th1 polarization of responding T cells. Infect. Immun., 2015, vol. 83, no. 6, pp. 2242–2254. doi:10.1128/iai.00135-15.

83. Rivas-Santiago B., Hernandez-Pando R., Carranza C., Juarez E., Contreras J.L., Aguilar-Leon D., Torres M., Sada E. Expression of Cathelicidin LL-37 during Mycobacterium tuberculosis Infection in Human Alveolar Macrophages, Monocytes, Neutrophils, and Epithelial Cells. Infect. Immun., 2008, vol. 76, no. 3, pp. 935–941. doi:10.1128/IAI.01218-07.

84. Rivas-Santiago B., Contreras J.C.L., Sada E., Hernández-Pando R. The potential role of lung epithelial cells and β-defensins in experimental latent tuberculosis. Scand. J. Immunol., 2008, vol. 67, no. 5, pp. 448–452. doi:10.1111/j.1365-3083.2008.02088.x.

85. Rocha-Ramírez L.M., Estrada-García I., López-Marín L.M., Segura-Salinas E., Méndez-Aragón P., Soolingen D. Van, Torres-González R., Chacón-Salinas R., Estrada-Parra S., Maldonado-Bernal C., López-Macías C., Isibasi A. Mycobacterium tuberculosis lipids regulate cytokines, TLR-2/4 and MHC class II expression in human macrophages. Tuberculosis, 2008, vol. 88, no. 3, pp. 212–220. doi:10.1016/J.TUBE.2007.10.003.

86. Rothfuchs A.G., Bafica A., Feng C.G., Egen J.G., Williams D.L., Brown G.D., Sher A. Dectin-1 interaction with Mycobacterium tuberculosis leads to enhanced IL-12p40 production by splenic dendritic cells. J. Immunol., 2007, vol. 179, no. 6, pp. 3463–3471. doi:10.4049/jimmunol.179.6.3463.

87. Saavedra R., Segura E., Leyva R., Esparza L.A., López-Marín L.M. Mycobacterial di-O-acyl-trehalose inhibits mitogen-and antigen-induced proliferation of murine T cells in vitro. Clin. Diagn. Lab. Immunol., 2001, vol. 8, no. 6, pp. 1081–1088. doi: 10.1128/CDLI.8.6.1-91–1088.2001.

88. Sakamoto K., Kim M.J., Rhoades E.R., Allavena R.E., Ehrt S., Wainwright H.C., Russell D.G., Rohde K.H. Mycobacterial trehalose dimycolate reprograms macrophage global gene expression and activates matrix metalloproteinases. Infect. Immun., 2013, vol. 81, no. 3, pp. 764–776. doi: 10.1128/IAI.00906-12.

89. Schlesinger L.S., Azad A.K., Torrelles J.B., Roberts E. Determinants of phagocytosis , phagosome biogenesis and autophagy for Mycobacterium tuberculosis. In: Kaufmann SHE, Britton WJ, editors. Handbook of Tuberculosis. Immunology and Cell Biology. Wiley-VCH Verlag; Weinheim, Germany: 2008. pp. 1–22.

90. Schlesinger L., Torrelles J., Azad A., Henning L., Carlson T. Role of C-Type lectins in Mycobacterial infections. Curr. Drug Targets, 2008, vol. 9, no. 2, pp. 102–112. doi:10.2174/138945008783502467.

91. Schurz H., Daya M., Möller M., Hoal E.G., Salie M. TLR1, 2, 4, 6 and 9 variants associated with tuberculosis susceptibility: a systematic review and meta-analysis. PLOS One, 2015, vol. 10, no. 10, pp. e0139711. doi:10.1371/journal.pone.0139711.

92. Selvaraj P., Jawahar M.S., Rajeswari D.N., Alagarasu K., Vidyarani M., Narayanan P.R. Role of mannose binding lectin gene variants on its protein levels and macrophage phagocytosis with live Mycobacterium tuberculosis in pulmonary tuberculosis. FEMS Immunol. Med. Microbiol., 2006, vol. 46, no. 3, pp. 433–437. doi: 10.1111/j.1574-695X.2006.00053.x

93. Sepehri Z., Kiani Z., Kohan F., Ghavami S. Toll-like receptor 4 as an immune receptor against Mycobacterium tuberculosis: a systematic review. Lab. Med., 2018. doi: 10.1093/labmed/lmy047.

94. Sequeira P.C., Senaratne R.H., Riley L.W. Inhibition of toll-like receptor 2 (TLR-2)-mediated response in human alveolar epithelial cells by mycolic acids and Mycobacterium tuberculosis mce1 operon mutant. Pathog. Dis., 2014, vol. 70, no. 2, pp. 132–140. doi:10.1111/2049-632X.12110.

95. Sever-Chroneos Z., Tvinnereim A., Hunter R.L., Chroneos Z.C. Prolonged survival of scavenger receptor class A-deficient mice from pulmonary Mycobacterium tuberculosis infection. Tuberculosis (Edinb), 2011, vol. 91, no. suppl 1, pp. S69-74. doi:10.1016/j.tube.2011.10.014.

96. Shin D.M., Yuk J.M., Lee H.M., Lee S.H., Son J.W., Harding C. V., Kim J.M., Modlin R.L., Jo E.K. Mycobacterial lipoprotein activates autophagy via TLR2/1/CD14 and a functional vitamin D receptor signalling. Cell. Microbiol., 2010, vol. 12, no. 11, pp. 1648–1665. doi:10.1111/j.1462-5822.2010.01497.x.

97. Søborg C., Madsen H.O., Andersen A.B., Lillebaek T., Kok-Jensen A., Garred P. Mannose-binding lectin polymorphisms in clinical tuberculosis. J. Infect. Dis., 2003, vol. 188, no. 5, pp. 777–782. doi:10.1086/377183.

98. Soeroto A.Y., Dahlan Z., Kartasasmita C.B., Parwati I. Association between Arg753Gln and Arg677Trp polymorphisms of TLR2 gene with active pulmonary tuberculosis in an indonesian population. Acta Med. Indones., 2018, vol. 50, no. 1, p. 53—60.

99. Sorensen G.L. Surfactant protein D in respiratory and non-respiratory diseases. Front. Med., 2018, vol. 5., no. 18. doi: 10.3389/fmed.2018.00018.

100. Srivastava V., Manchanda M., Gupta S., Singla R., Behera D., Das G., Natarajan K. Toll-like receptor 2 and DC-SIGNR1 differentially regulate suppressors of cytokine signaling 1 in dendritic cells during Mycobacterium tuberculosis infection. Journal of Biological Chemistry., 2009, vol. 284, no. 38, pp. 25532–25541. doi:10.1074/jbc.M109.006221.

101. Suzuki T., Chow C., Downey G.P. Role of innate immune cells and their products in lung immunopathology. Int. J. Biochem. Cell Biol., 2008, vol. 40, no. 6-7, pp. 1348–1361. doi:10.1016/j.biocel.2008.01.003.

102. Tailleux L., Schwartz O., Herrmann J.-L., Pivert E., Jackson M., Amara A., Legres L., Dreher D., Nicod L.P., Gluckman J.C., Lagrange P.H., Gicquel B., Neyrolles O. DC-SIGN is the major Mycobacterium tuberculosis receptor on human dendritic cells. J. Exp. Med., 2003, vol. 197, no. 1, pp. 121–127. doi:10.1084/jem.20021468.

103. Tailleux L., Pham-Thi N., Bergeron-Lafaurie A., Herrmann J.L., Charles P., Schwartz O., Scheinmann P., Lagrange P.H., Blic J. De, Tazi A., Gicquel B., Neyrolles O. DC-SIGN induction in alveolar macrophages defines privileged target host cells for mycobacteria in patients with tuberculosis. PLoS Med., 2005, vol. 2, no. 12, pp. 1269–1279. doi:10.1371/journal.pmed.0020381.

104. Takeuchi O., Sato S., Horiuchi T., Hoshino K., Takeda K., Dong Z., Modlin R.L., Akira S. Cutting edge: role of Toll-like receptor 1 in mediating immune response to microbial lipoproteins. J. Immunol., 2002, vol. 169, no. 1, pp. 10–14. doi:10.4049/jimmunol.169.1.10.

105. Torrelles J.B., Azad A.K., Schlesinger L.S. Fine discrimination in the recognition of individual species of phosphatidyl-myo-inositol mannosides from Mycobacterium tuberculosis by C-type lectin pattern recognition receptors. J. Immunol., 2006, vol. 177, no. 3, pp. 1805–1816. doi:10.4049/jimmunol.177.3.1805

106. Udgata A., Qureshi R., Mukhopadhyay S. Transduction of functionally contrasting signals by two mycobacterial PPE proteins downstream of TLR2 receptors. J. Immunol., 2016, vol. 197, no. 5, pp. 1776–1787. doi:10.4049/jimmunol.1501816.

107. van der Veerdonk F.L., Teirlinck A.C., Kleinnijenhuis J., Kullberg B.J., van Crevel R., van der Meer J.W.M., Joosten L.A.B., Netea M.G. Mycobacterium tuberculosis induces IL-17A responses through TLR4 and dectin-1 and is critically dependent on endogenous IL-1. J. Leukoc. Biol., 2010, vol. 88, no. 2, pp. 227–232. doi:10.1189/jlb.0809550.

108. Villeneuve C., Gilleron M., Maridonneau-Parini I., Daffe M., Astarie-Dequeker C., Etienne G. Mycobacteria use their surface-exposed glycolipids to infect human macrophages through a receptor-dependent process. J. Lipid Res., 2005, vol. 46, no. 3, pp. 475–483. doi:10.1194/jlr.M400308-JLR200.

109. Wieland C.W., van der Windt G.J.W., Wiersinga W.J., Florquin S., van der Poll T. CD14 contributes to pulmonary inflammation and mortality during murine tuberculosis. Immunology, 2008, vol. 125, no. 2, pp. 272–279. doi:10.1111/j.1365-2567.2008.02840.x.

110. Wright J.R. Immunoregulatory functions of surfactant proteins. Nat. Rev. Immunol., 2005, vol. 5, no. 1, pp. 58–68. doi:10.1038/nri1528.

111. Wu S., Huang W., Wang D., Wang Y., Wang M., Zhang M., He J.-Q. Evaluation of TLR 2, TLR 4, and TOLLIP polymorphisms for their role in tuberculosis susceptibility. Apmis, 2018, vol. 126, no. 6, pp. 501–508. doi: 10.1111/apm.12855.

112. Xu Q., Jin M.M., Zheng W.W., Zhu L., Xu S.L. Role of Toll-like receptor 2/4-nuclear factor-κB signaling pathway in invasion of Mycobacterium tuberculosis to mouse dendritic cells. Zhejiang Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban, 2014, vol. 43, no. 2, pp. 200–206.

113. Xue Y., Zhao Z.Q., Chen F., Zhang L., Li G.D., Ma K.W., Bai X.F., Zuo Y.J. Polymorphisms in the promoter of the CD14 gene and their associations with susceptibility to pulmonary tuberculosis. Tissue Antigens, 2012, vol. 80, no. 5, pp. 437–443. doi:10.1111/j.1399-0039.2012.01958.x.

114. Yadav M., Schorey J.S. The β-glucan receptor dectin-1 functions together with TLR2 to mediate macrophage activation by mycobacteria. Blood, 2006, vol. 108, no. 9, pp. 3168–3175. doi:10.1182/blood-2006-05-024406.

115. Yang C.-S., Shin D.-M., Kim K.-H., Lee Z.-W., Lee C.-H., Park S.G., Bae Y.S., Jo E.-K. NADPH oxidase 2 interaction with TLR2 is required for efficient innate immune responses to mycobacteria via cathelicidin expression. J. Immunol., 2009, vol. 182, no. 6, pp. 3696–705. doi:10.4049/jimmunol.0802217.

116. Yang Y., Kulka K., Montelaro R.C., Reinhart T.A., Sissons J., Aderem A., Ojha A.K. A hydrolase of trehalose dimycolate induces nutrient influx and stress sensitivity to balance intracellular growth of Mycobacterium tuberculosis. Cell Host Microbe, 2014, vol. 15, no. 2, pp. 153–163. doi: 10.1016/j.chom.2014.01.008.

117. Zenaro E., Donini M., Dusi S. Induction of Th1/Th17 immune response by Mycobacterium tuberculosis: role of dectin-1, mannose receptor, and DC-SIGN. J. Leukoc. Biol., 2009, vol. 86, no. 6, pp. 1393–1401. doi:10.1189/jlb.0409242.

118. Zimmermann N., Saiga H., Houthuys E., Moura-Alves P., Koehler A., Bandermann S., Dorhoi A., Kaufmann S.H.E. Syndecans promote mycobacterial internalization by lung epithelial cells. Cell. Microbiol., 2016, vol. 18, no. 12, pp. 1846–1856. doi:10.1111/cmi.12627.


Дополнительные файлы

1. Метаданные
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (14KB)    
Метаданные
2. Подписи авторов
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (664KB)    
Метаданные
3. Титульный лист
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (16KB)    
Метаданные
4. Резюме
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (14KB)    
Метаданные
5. Литература
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (299KB)    
Метаданные

Для цитирования:


Лапштаева А.В., Живечкова Е.А., Живечкова Е.А., Сычев И.В., Сычев И.В., Евсегнеева И.В., Евсегнеева И.В., Новиков В.В., Новиков В.В. РЕЦЕПТОРЫ ВРОЖДЕННОГО ИММУНИТЕТА В РАЗВИТИИ ИНФЕКЦИИ, ВЫЗВАННОЙ MYCOBACTERIUM TUBERCULOSIS. Инфекция и иммунитет. 2019;. https://doi.org/10.15789/2220-7619-ROI-1169

For citation:


Lapshtaeva A.V., Zhivechkova E.A., Zhivechkova E.A., Sychev I.V., Sychev I.V., Evsegneeva I.V., Evsegneeva I.V., Novikov V.V., Novikov V.V. RECEPTORS OF INNATE IMMUNITY IN DEVELOPMENT OF INFECTION CAUSED BY MYCOBACTERIUM TUBERCULOSIS. Russian Journal of Infection and Immunity. 2019;. (In Russ.) https://doi.org/10.15789/2220-7619-ROI-1169

Просмотров: 31


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2220-7619 (Print)
ISSN 2313-7398 (Online)