Preview

Инфекция и иммунитет

Расширенный поиск

Показатели системы нейропептидов в острый период опоясывающего герпеса

https://doi.org/10.15789/2220-7619-TFO-1256

Полный текст:

Аннотация

Система нейропептидов является важной частью взаимодействия нервной системы с эндокринной и иммунной. Пептидные регуляторы отвечают за непрерывность связи элементов систем, поддерживающих гомеостаз в организме, однако несмотря на обилие исследований в области нейропептидов, расшифрованы не все конкретные механизмы и особенности взаимодействия белковых молекул с клетками и элементами иммунной системы, в том числе и при заболеваниях. Цель исследования: провести комплексную оценку состояния системы нейропептидов у пациентов с опоясывающим герпесом. Материалы и методы. Было обследовано 106 пациентов, находящихся на стационарном лечении с диагнозом опоясывающий герпес в период с 2016 по 2019 гг. Группу контроля составили 30 практически здоровых добровольцев сопоставимых по возрасту и полу. У всех пациентов был установлен и верифицирован диагноз, произведен забор сыворотки крови в первые сутки госпитализации. Через 3 месяца после выписки проводилось мониторирование состояния пациентов и их болевого синдрома. Это позволило ретроспективно разделить пациентов на 3 группы. Группа 1 — пациенты с опоясывающим герпесом, сопровождающимся слабым или умеренным болевым синдромом; группа 2 — пациенты с опоясывающим герпесом, сопровождающимся сильной болью; группа 3 — пациенты с опоясывающим герпесом, осложнившимся постгерпетической невралгией. Определение белка s100B, основного белка миелина, фактора роста нервов, мозгового нейротрофического фактора, нейронспецифической энолазы в сыворотке венозной крови проводили с помощью специфических реактивов фирмы «R&D Diagnostics Inc.» (США). Результаты. Было установлено достоверное повышение сывороточного содержания белка S100B во всех группах в сравнении с группой контроля, без различий между группами пациентов. Основной белок миелина был достоверно выше во всех исследуемых группах относительно контроля. Показатели в группе 2 были достоверно выше, чем в группах 1 и 3. Содержание фактора роста нервов было достоверно повышено в группе 1 в сравнении с контролем, с группами 2 и 3. В группе 3 показатель был существенно ниже, чем в группе контроля и в группе 2. Мозговой нейротрофический фактор был достоверно снижен во всех обследуемых группах в сравнении с контрольными значениями, без значимых различий между группами. Уровень нейронспецифической энолазы в сыворотке крови был достоверно повышен относительно группы контроля и остальных двух групп пациентов лишь в группе 3. Полученные данные позволили выделить два классификатора для оценки риска развития постгерпетической невралгии в острый период опоясывающего герпеса, а также дали углубленное понимание патогенеза нейроиммунных нарушений, сопровождающих опоясывающий герпес.

Об авторах

С. В. Кныш
ФГБОУ ВО Тихоокеанский государственный медицинский университет Минздрава России
Россия

Кныш Сергей Васильевич – ассистент кафедры нормальной и патологической физиологии

690002, г. Владивосток, пр. Острякова, 2
Тел.: 8 995 773-65-23 



Е. В. Маркелова
ФГБОУ ВО Тихоокеанский государственный медицинский университет Минздрава России
Россия

д.м.н., профессор, зав. кафедрой нормальной и патологической физиологии

г. Владивосток



А. И. Симакова
ФГБОУ ВО Тихоокеанский государственный медицинский университет Минздрава России
Россия

д.м.н., доцент, зав. кафедрой нормальной и патологической физиологии

г. Владивосток



А. В. Караулов
ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Минздрава России
Россия

д.м.н. академик РАН, зав. кафедрой клинической иммунологии и аллергологии

Москва



Список литературы

1. Дюйзен И.В., Иванис В.А., Михайлов А.С., Менчинская Е.С., Манжуло И.В., Огурцова О.С. Исследование содержания нейрональных маркеров при некоторых инфекционных заболеваниях // Тихоокеанский медицинский журнал. 2015. № 60 (2). С. 27–30.

2. Кныш С.В., Малков В.А., Чагина Е.А., Потапенко А.А. Изменение матриксной металлопротеиназы-9 и ее тканевого ингибитора-1 при опоясывающем герпесе // Российский иммунологический журнал. 2018. № 4. С. 683–685. doi:10.31857/s102872210002637-5

3. Кныш С.В., Мачтарева Е.С., Васильева М.М., Малков В.А., Минибаев В.Р. Матриксная металлопротеиназа-2 в патогенезе герпетической невралгии // Российский аллергологический журнал. 2019. № 1 (2). С. 73–75.

4. Ясенявская А.Л., Самотруева М.А., Башкина О.А., Андреева Л.А., Мясоедов Н.Ф., Тюренков И.Н., Караулов А.В. Нейропептидная регуляция иммунитета // Иммунология. 2018. № 39 (5–6). С. 326–336. doi: 10.18821/0206-4952-2018-39-5-6-326-336

5. Aloe L., Rocco M.L., Balzamino B.O., Micera A. Nerve growth factor: a focus on neuroscience and therapy. Curr. Neuropharmacol., 2015, no. 13 (3), pp. 294–303. doi: 10.2174/1570159X13666150403231920

6. Aloe L., Rocco M.L., Balzamino B.O., Micera A. Nerve growth factor: role in growth, differentiation and controlling cancer cell development. J. Exp. Clin. Cancer Res., 2016, no. 35 (1), pp. 116. doi: 10.1186/s13046-016-0395-y

7. Borodinova A.A., Salozhin S.V. Differences in the biological functions of BDNF and proBDNF in the central nervous system. Neurosci. Behav. Physiol., 2017, vol. 47, no. 3, pp. 251–265.

8. Cabrera J.R., Viejo-Borbolla A., Alcamí A., Wandosell F. Secreted herpes simplex virus-2 glycoprotein G alters thermal pain sensitivity by modifying NGF effects on TRPV1. J. Neuroinflamm., 2016, no. 13 (1), p. 210. doi:10.1186/s12974-016-0677-5

9. Dai C.-X., Hu C.-C., Shang Y.-S., Xie J. Role of Ginkgo biloba extract as an adjunctive treatment of elderly patients with depression and on the expression of serum S100B. Medicine, 2018, no. 97 (39): e12421. doi: 10.1097/md.0000000000012421

10. Eng J. ROC analysis: web-based calculator for ROC curves. Baltimore: Johns Hopkins University [updated 2014 March 19; cited 2019 July 23]. URL: http://www.jrocfit.org

11. Fran ç a K., Lotti T.M. Psycho-neuro-endocrine-immunology: a psychobiological concept. In: Advances in Experimental Medicine and Biology. Adv. Exp. Med. Biol., 2017, no. 996, pp. 123–134. doi: 10.1007/978-3-319-56017-5_11

12. Gonzales-Gronow M., Pizzo S.V. Relevance of catalytic autoantibodies to myelin basic protein (MBP) in autoimmune disorders. J. Neurol. Neuromed., 2018, no. 3 (4), pp. 75–78.

13. Goyal A., Failla M.D., Niyonkuru C., Amin K., Fabio A., Berger R.P., Wagner A.K. S100b as a prognostic biomarker in outcome prediction for patients with severe traumatic brain injury. J. Neurotrauma, 2013, no. 30 (11), pp. 946–957. doi: 10.1089/neu.2012.2579

14. Haque A., Capone M., Matzelle D., Cox A., Banik N. Targeting enolase in reducing secondary damage in acute spinal cord injury in rats. Neurochem. Res., 2017, no. 42 (10), pp. 2777–2787. doi: 10.1007/s11064-017-2291-z

15. Hedegaard C.J., Chen N., Sellebjerg F., Sørensen P.S., Leslie R.G.Q., Bendtzen K., Nielsen C.H. Autoantibodies to myelin basic protein (MBP) in healthy individuals and in patients with multiple sclerosis: a role in regulating cytokine responses to MBP. Immunology, 2009, no. 128 (pt. 2): e451–e461. doi: 10.1111/j.1365-2567.2008.02999.x

16. Ji R-R., Xu Z-Z., Wang X., Lo E.H. Matrix metalloprotease regulation of neuropathic pain. Trends Pharmacol. Sci., 2009, no. 30 (7), pp. 336–340. doi: 10.1016/j.tips.2009.04.002

17. Kurapati S., Sadaoka T., Rajbhandari L., Jagdish B., Shukla P., Ali M.A., Kim Y.J., Lee G., Cohen J.I., Venkatesan A. Role of the JNK pathway in varicella-zoster virus lytic infection and reactivation. J. Virol., 2017, no. 91: e00640-17.

18. Lakhan S.E., Avramut M. Matrix metalloproteinases in neuropathic pain and migraine: friends, enemies, and therapeutic targets. Pain Res. Treat., 2012, no. 2012, pp. 1–10. doi: 10.1155/2012/952906

19. Miranpuri G.S., Meethal S.V., Sampene E., Chopra A., Buttar S., Nacht C., Moreno N., Patel K., Liu L., Singh A., Singh C.K., Hariharan N., Iskandar B., Resnick D.K. Folic acid modulates matrix metalloproteinase-2 expression, alleviates neuropathic pain, and improves functional recovery in spinal cord-injured rats. Ann. Neurosciences., 2017, no. 24 (2), pp. 74–81. doi: 10.1159/000475896

20. Morey J.N., Boggero I.A., Scott A.B., Segerstrom S.C. Current directions in stress and human immune function. Curr. Opin. Psychol., 2015, no. 5, pp. 13–17. doi:10.1016/j.copsyc.2015.03.007

21. Polcyn R., Capone M., Hossain A., Matzelle D., Banik N.L., Haque A. Neuron specific enolase is a potential target for regulating neuronal cell survival and death: implications in neurodegeneration and regeneration. Neuroimmunol. Neuroinflamm., 2017, no. 4, pp. 254–257. doi: 10.20517/2347-8659.2017.59

22. Qin G., Gui B., Xie J., Chen L., Chen L., Cui Z., Zhou J., Tan G. Tetrandrine alleviates nociception in a rat model of migraine via suppressing S100B and p-ERK activation in satellite glial cells of the trigeminal ganglia. J. Mol. Neurosci., 2017, no. 64 (1), pp. 29–38. doi:10.1007/s12031-017-0999-5

23. Sadaoka T., Depledge D.P., Rajbhandari L., Venkatesan A., Breuer J., Cohen J.I. In vitro system using human neurons demonstrates that varicella-zoster vaccine virus is impaired for reactivation, but not latency. PNAS, 2016, no. 113 (17), pp. E2403–E2412.

24. Saxena A.K, Lakshman K., Sharma T., Gupta N., Banerjee B.D., Singal A. Modulation of serum BDNF levels in postherpetic neuralgia following pulsed radiofrequency of intercostal nerve and pregabalin. Pain Management, 2016, no. 6 (3), pp. 217–227.

25. Shubayev V., Strongin A., Yaksh T. Role of myelin auto-antigens in pain: a female connection. Neural Regen. Res., 2016, no. 11 (6), pp. 890–891. doi: 10.4103/1673-5374.184452

26. Sorci G., Riuzzi F., Arcuri C., Tubaro C., Bianchi R., Giambanco I., Donato R. S100B protein in tissue development, repair and regeneration. World J. Biol. Chem., 2013, no. 4 (1), pp. 1–12. doi: 10.4331/wjbc.v4.i1.1

27. Villarreal A., Seoane R., Gonz á lez Torres A., Rosciszewski G., Angelo M.F., Rossi A., Barker P.A., Ramos A.J. S100B protein activates a RAGE-dependent autocrine loop in astrocytes: implications for its role in the propagation of reactive gliosis. J. Neurochemistry, 2014, no. 131 (2), pp. 190–205. doi: 10.1111/jnc.12790

28. Weil M.T., Möbius W., Winkler A., Ruhwedel T., Wrzos C., Romanelli E., Bennett J.L., Enz L., Goebels N., Nave K.A., Kerschensteiner M., Schaeren-Wiemers N., Stadelmann C., Simons M. Loss of myelin basic protein function triggers myelin breakdown in models of demyelinating diseases. Cell Rep., 2016, no. 16 (2), pp. 314–322. doi: 10.1016/j.celrep.2016.06.008

29. Wu C., Li C., Hou W., Chiang P., Tsai K. Gain of BDNF function in engrafted neural stem cells promotes the therapeutic potential for Alzheimer’s disease. Scientific Reports, 2016, no. 6, p. 27358.

30. Zhang P., Tan C-W., Chen G-H., Ge Y-J., Xu J., Xia L., Wang F., Li X-Y., Kong X-Y. Patients with chronic insomnia disorder have increased serum levels of neurofilaments, neuron-specific enolase and S100B: does organic brain damage exist? Sleep Medicine, 2018, no. 48, pp. 163–171. doi:10.1016/j.sleep.2017.12.012

31. Zhao G., Zhang C., Chen J., Su Y., Zhou R., Wang F., Xia W., Huang J., Wang Z., Hu Y., Cao L., Guo X., Yuan C., Wang Y., Yi Z., Lu W., Wu Y., Wu Z., Hong W., Peng D., Fang Y. Ratio of mBDNF to proBDNF for differential diagnosis of major depressive disorder and bipolar depression. Molecular Neurobiology, 2016, no. 54 (7), pp. 5573–5582. doi:10.1007/s12035-016-0098-6


Дополнительные файлы

1. Титульный лист
Тема
Тип Данные
Скачать (17KB)    
Метаданные
2. Рисунок1
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (16KB)    
Метаданные
3. Рисунок2
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (14KB)    
Метаданные
4. Таблица 1. Характеристика обследуемых групп
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (16KB)    
Метаданные
5. Таблица 2 – Сывороточное содержание исследуемых показателей у обследуемого контингента
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (18KB)    
Метаданные
6. Метаданные
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (12KB)    
Метаданные
7. Резюме
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (15KB)    
Метаданные
8. Подписи авторов
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (10MB)    
Метаданные
9. Список литературы
Тема
Тип Прочее
Скачать (17KB)    
Метаданные
10. Неозаглавлен
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (39KB)    
Метаданные

Для цитирования:


Кныш С.В., Маркелова Е.В., Симакова А.И., Караулов А.В. Показатели системы нейропептидов в острый период опоясывающего герпеса. Инфекция и иммунитет. 2020;10(2):329-337. https://doi.org/10.15789/2220-7619-TFO-1256

For citation:


Knysh S.V., Markelova E.V., Simakova A.I., Karaulov A.V. Neuropeptide system parameters in acute herpes zoster. Russian Journal of Infection and Immunity. 2020;10(2):329-337. (In Russ.) https://doi.org/10.15789/2220-7619-TFO-1256

Просмотров: 211


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2220-7619 (Print)
ISSN 2313-7398 (Online)