Preview

Инфекция и иммунитет

Расширенный поиск

Молекулярно-генетические и клинические аспекты социально-значимых вирусов в реализации врожденных заболеваний

https://doi.org/10.15789/2220-7619-MGA-1729

Полный текст:

Аннотация

Врожденные вирусные инфекционные заболевания – полиэтиологичная патология, занимающая существенное место в структуре перинатальных потерь. Ввиду широкого распространения и отсутствия специфической профилактики наибольший интерес представляет проблема герпесвирусных инфекций, а именно герпетическая инфекция, вызванная вирусом простого герпеса 1,2 типа, герпесвирусная инфекция, вызванная вирусом герпеса человека 6 типа и цитомегаловирусная инфекция, а также парвовирусная инфекция В19. С развитием методов полногеномного секвенирования и созданием международных банков генетических данных, расширились возможности изучения зависимости проявлений инфекционного процесса от молекулярно-генетических характеристик микроорганизмов.

Ограниченная гетерогенность вируса простого герпеса обусловлена относительно стабильным ДНК-геномом и долгой эволюционной историей. Естественные генетические вариации могут определять нейровирулентность вируса, что показано при сравнении клинических проявлений и течении заболевания при поражении ВПГ-1 и ВПГ-2 с генетическими и фенотипическими характеристиками изолятов вируса.

Известно, что генотип gB1 цитомегаловируса ассоциирован с гепатоспленомегалией, показана связь между генотипом gB2, нарушением слуха и симптомами заболеваний центральной нервной системы у новорожденных с врожденной и перинатальной инфекцией. В тоже время отмечено, что у новорожденных с врожденной манифестной цитомегаловирусной инфекцией преобладает генотип gB3. Тем не менее данные о корреляции между генотипами и клиническими проявлениями все еще фрагментарны и противоречивы, а при сравнении геномных последовательностей штаммов становится очевидным чрезвычайно высокий уровень их вариабельности, что объясняет сложность создания анти-ЦМВ-вакцины.

Доказано, что инфекция вирусом герпеса 6 типа может привести интеграции вируса в герминативные клетки с возможностью последующей вертикальной передачи хромосомно-интегрированного вируса потомству и дальнейшим его наследованием от поколения к поколению (от одного или обоих родителей). Наследуемая хромосомная интеграция описана как для ВГЧ-6А, так и ВГЧ-6В. Предполагается, что люди с хромосомно-интегрированным ВГЧ-6А/В могут иметь сниженную способность бороться с вторичной инфекцией ВГЧ-6 и легко инфицируются экзогенными штаммами ВГЧ-6.

При изучении молекулярно-генетических характеристик изолятов парвовируса В19V, выделенных от больных парвовирусной инфекцией выявлено, что генотип 2 связан с более тяжелыми нарушениями сердечной функции по сравнению с генотипом 1. Однако прямая взаимосвязь между геновидами B19V и проявлениями заболевания, в том числе - врожденного до настоящего времени не установлена. Несмотря на генетическую разнородность возбудителя, клиническая картина заболевания сходная для разных штаммов парвовируса В19V, как в отсутствии беременности, так и при ее наличии, а последствия приобретенной инфекции для плода идентичны.

Представляется целесообразным расширение научного поиска по генотипированию вирусов простого герпеса, цитомегаловируса, вирусов герпеса 6 типа парвовируса В19V в России с учетом возможных различий в географическом распространении этих вирусов на территории Российской Федерации, этнических особенностей населения, высокой частоты вызываемых этими вирусами врожденных инфекционных заболеваний с широким спектром клинических проявлений.

Результаты этих поисков будут востребованы практическим здравоохранением в целях разработки и применения более эффективных этиотропных препаратов и средств специфической профилактики в свете тенденций развития персонифицированный и превентивной медицины.

Об авторах

А. А. Гринева
ФГБУ ДНКЦИБ ФМБА России
Россия

к.м.н., научный сотрудник научно-исследовательского отдела врожденных инфекционных заболеваний ФГБУ ДНКЦИБ ФМБА России



В. В. Васильев
ФГБУ ДНКЦИБ ФМБА России ФГБОУ ВО СЗГМУ им.И.И.Мечникова
Россия


Н. В. Рогозина
ФГБУ ДНКЦИБ ФМБА России ФГБОУ ВО СПбГПМУ
Россия


Список литературы

1. Литература

2. Порядковый номер ссылки Авторы, название публикации и источника, где она опубликована, выходные данные ФИО, название публикации и источника на английском Полный интернет-адрес (URL) цитируемой статьи и/или

3. Антипова А. Ю., Хамитова И. В., Останкова Ю. В., Семенов А. В., Бичурина М. А., Лаврентьева И. Н. Молекулярно-генетическая характеристика изолятов парвовируса B19, циркулирующих на территории Северо-Западного федерального округа // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2018. № 6. С. 55-61. Antipova AU., Hamitova IV., Ostankova UV., Semenov AV., Bichurina MA., Lavrent'eva IN. Molecular genetic characteristics of parvovirus B19 isolates circulating in the Northwestern Federal District // Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunobiology. 2018, no. 6, pp. 55-61. doi 10.36233/0372-9311-2018-6-55-61.

4. Антипова А.Ю., Лаврентьева И.Н. Вирусы семейства Parvoviridae: молекулярно-генетические аспекты репродукции и медицинская значимость // Инфекция и иммунитет. 2017. Т. 7, № 1. С. 7–20. Antipova AU., Lavrent'eva IN. Viruses of the Parvoviridae family: molecular genetic aspects of reproduction and medical significance // Infection and Immunity. 2017, Vol. 7, no. 1, pp. 7–20. doi: 10.15789/2220-7619-2017-1-7-20.

5. Володин, Н.Н. Актуальные проблемы неонатологии. М.: ГЭОТАР-Мед, 2004. 448 с. Volodin NN. Actual problems of neonatology. M.: GEOTAR-Med, 2004. 448 p.

6. Гринева А.А., Васильев В.В., Каштанова Т.А., Кянксеп И.В. Антенатальная диагностика и терапия врожденной инфекции, вызванной парвовирусом В19 (клинический случай) // Журнал инфектологии. 2020. Т. 12, № 4. С.109-113. Grineva AA., Vasilev VV., Kashtanova TA, Kyanksep IV. Antenatal diagnosis and therapy of congenital infection caused by parvovirus B19 (clinical case) // Journal of Infectology. 2020, vol. 12, no. 4, pp.109-113. https://doi.org/10.22625/2072-6732-2020-12-4-109-113.

7. Ермолович М. А., Семейко Г. В., Самойлович Е. О. Генетические варианты парвовируса B19, циркулирующие в Беларуси в течение эпидемического цикла инфекции (2005–2016) //Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия медицинских наук. 2019. Т. 16, №. 1. С. 35-45.

8. Ermolovich MA, Semejko GV, Samojlovich EO. Genetic variants of parvovirus B19 circulating in Belarus during the epidemic cycle of infection (2005–2016) // News of the National Academy of Sciences of Belarus. Medical Science Series. 2019, vol. 16, no. 1, pp. 35-45. doi 10.29235/1814-6023-2019-16-1-35-45.

9. Ермолович М. А., Семейко Г. В., Самойлович Е. О. Молекулярная эпидемиология парвовирусной инфекции в Республике Беларусь //Вопросы вирусологии. 2010. Т. 55, №. 2. С. 26-31. Ermolovich MA, Semejko GV, Samojlovich EO. Molecular epidemiology of parvovirus infection in the Republic of Belarus // Problems of Virology. 2010, vol. 55, no, pp. 26-31.

10. Ермолович М. А., Семейко Г. В., Самойлович Е. О., Хрусталев В.В. Разнообразие геновариантов парвовируса В19, циркулировавших в Беларуси в 2017-2018 гг. // Медицинский журнал. 2020. № 2(72). С.55-60. Ermolovich MA, Semejko GV, Samojlovich EO., Hrustalev VV. Diversity of genovariants of parvovirus B19 circulating in Belarus in 2017-2018 // Medical journal. 2020, no. 2 (72), pp. 55-60. http://rep.bsmu.by:8080/handle/BSMU/28522

11. Куюмчьян С.Х., Васильев В.В., Алексеева Н.П. Факторы риска и прогноз развития некоторых актуальных врожденных (внутриутробных) инфекций // Журнал инфектологии. 2016. Т 8, № 1. С. 38-44. Kuyumchyan SH, Vasilev VV, Alekseeva NP. Risk factors and prognosis for the development of some actual congenital (intrauterine) infections // Journal of Infectology. 2016, vol. 8, no.1, pp. 38-44.

12. Лаврентьева И. Н., Антипова А. Ю, Семенов А. В., Бичурина М. А. Генотипирование изолятов парвовируса В19, циркулирующих в Северо-Западном федеральном округе России // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2013. №. 6. C. 36-43. Lavrenteva IN, Antipova AU, Semenov A. V., Bichurina M. A. Genotyping of parvovirus B19 isolates circulating in the Northwestern Federal District of Russia // Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunobiology, 2013, no 6, pp. 36-43

13. Лобзин Ю.В., Скрипченко Н.В., Васильев В.В., Рогозина Н.В., Бабаченко И.В., Левина А.С., Харит С.М., Бехтерева М.К., Рулева А.А., Сиземов А.Н., Иванова М.В., Техова И.Г., Ушакова Г.М., Осипова З.А., Голева О.В., Комарова А.М., Бухалко М.А. Диагностика, лечение и профилактика актуальных врожденных инфекций: учебное пособие для интернов, ординаторов, врачей-педиатров, врачей общей практики, инфекционистов. Санкт-Петербург, 2017. 64 с. Lobzin YV, Skripchenko NV, Vasilev VV, Rogozina NV, Babachenko IV, Levina AS, Harit SM, Bekhtereva MK, Ruleva AA, Sizemov AN, Ivanova MV, Tekhova IG, Ushakova GM, Osipova ZA, Goleva OV, Komarova AM, Buhalko MA. Diagnostics, treatment and prevention of actual congenital infections: a textbook for interns, residents, pediatricians, general practitioners, infectious disease specialists. St. Petersburg, 2017. P.64.

14. Неонатология: национальное руководство. Н.Н. Володин, ред. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. – С. 355–393. Neonatology: a national guide. N.N. Volodin, ed. - M.: GEOTAR-Media, 2007. - S. 355–393.

15. Постановление Правительства РФ № 715 от 01.12.2004 г. «Об утверждении перечня социально значимых заболеваний и перечня заболеваний, представляющих опасность для окружающих» (в редакции постановлений Правительства Российской Федерации от 13.07.2012 № 710, от 31.01.2020 № 66). Decree of the Government of the Russian Federation No. 715 of 01.12.2004 "On approval of the list of socially significant diseases and the list of diseases that pose a danger to others" (as amended by decrees of the Government of the Russian Federation of 13.07.2012 No. 710, of 31.01.2020 no. 66). http://government.ru/docs/all/50614/.

16. Akhtar LN, Bowen CD, Renner DW, Pandey U, Della Fera AN, Kimberlin DW, Prichard MN, Whitley RJ, Weitzman MD, Szpara ML. Genotypic and Phenotypic Diversity of Herpes Simplex Virus 2 within the Infected Neonatal Population. mSphere, 2019, vol. 4, no 1, pp. e00590-18. - doi: 10.1128/mSphere.00590-18.

17. Alcami A. Viral mimicry of cytokines, chemokines and their receptors. Nature Reviews, 2003, vol. 3, no 1, pp. 36-50. - doi: 10.1038/nri980.

18. Alwan SN, Shamran HA, Ghaib AH, Kadhim HS, Al-Mayah QS, Al-Saffar AJ, Bayati AH, Arif HS, Fu J, Wickes BL. Genotyping of Cytomegalovirus from Symptomatic Infected Neonates in Iraq. The American journal of tropical medicine and hygiene, 2019, vol. 100, no 4, pp. 957-963. - doi: 10.4269/ajtmh.18-0152.

19. Arav-Boger R, Willoughby RE, Pass RF, Zong JC, Jang WJ, Alcendor D, Hayward GS. Polymorphisms of the cytomegalovirus (CMV)-encoded tumor necrosis factor-alpha and beta-chemokine receptors in congenital CMV disease. Journal of infectious diseases, 2002, vol. 186, no 8, pp. 1057-1064. - doi: 10.1086/344238.

20. Arbuckle JH, Medveczky MM, Luka J, Hadley SH, Luegmayr A, Ablashi D, Lund TC, Tolar J, De Meirleir K, Montoya JG, Komaroff AL, Ambros PF, Medveczky PG. The latent human herpesvirus-6A genome specifically integrates in telomeres of human chromosomes in vivo and in vitro. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2010, vol. 107, no 12, pp. 5563-8. - doi: 10.1073/pnas.0913586107.

21. Arellano-Galindo J, Villanueva-García D, Cruz-Ramirez JL, Yalaupari-Mejìa JP, Uribe-Gutiérrez G, Velazquez-Guadarrama N, Nava-Frias M, Munoz-Hernández O, Mejía-Arangure JM. Detection and gB genotyping of CMV in Mexican preterm infants in the context of maternal seropositivity. The Journal of Infection in Developing Countries, 2014, vol. 8, no 6, pp. 758-767. doi: 10.3855/jidc.3501.

22. Attwood LO, Holmes NE, Hui L. Identification and management of congenital parvovirus B19 infection. Prenatal Diagnostic, 2020, vol. 40, no 13, pp. 1722-1731. doi: 10.1002/pd.5819.

23. Barlinn R, Trogstad L, Rollag H, Frøen F, Magnus P, Dudman SG. Parvovirus B19 DNAemia in pregnant women in relation to perinatal death: A nested case-control study within a large population-based pregnancy cohort. Acta obstetricia et gynecologica Scandinavica, 2020, vol. 99, no 7, pp. 856-864. - doi: 10.1111/aogs.13801

24. Bascietto F, Liberati M, Murgano D, Buca D, Iacovelli A, Flacco ME, Manzoli L, Familiari A, Scambia G, D'Antonio F. Outcome of fetuses with congenital parvovirus B19 infection: systematic review and meta-analysis. Ultrasound Ultrasound in Obstetrics & Gynecology, 2018, vol. 52, no 5, pp. 569-576. - doi: 10.1002/uog.19092.

25. Belanger B. G., Lui F. Embryology, Teratology TORCH. 2019. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK545148/

26. Bell AJ, Gallagher A, Mottram T, Lake A, Kane EV, Lightfoot T, Roman E, Jarrett RF. Germ-line transmitted, chromosomally integrated HHV-6 and classical Hodgkin lymphoma. PLoS One, 2014, vol. 9, no 11, p. e112642. - doi: 10.1371/journal.pone.0112642.

27. Boeckh M, Geballe AP. Cytomegalovirus: pathogen, paradigm, and puzzle. The Journal of clinical investigation, 2011, vol. 121, no 5., pp. 1673–1680. - https ://doi.org/10.1172/JCI45 449.

28. Bowden R, Sakaoka H, Ward R, Donnelly P. Patterns of Eurasian HSV-1 molecular diversity and inferences of human migrations. Infection, Genetics and Evolution, 2006, vol. 6, no 1, pp. 63–74. - https://doi.org/10.1016/j.meegid.2005.01.004.20–22.

29. Britt WJ. Human cytomegalovirus infection in women with preexisting immunity: sources of infection and mechanisms of infection in the presence of antiviral immunity. The Journal of infectious diseases, 2020, vol. 221, no Supplement 1, pp. S1-S8. - doi: 10.1093/infdis/jiz464.

30. Cagliani R, Forni D, Mozzi A, Sironi M. Evolution and Genetic Diversity of Primate Cytomegaloviruses. Microorganisms, 2020, vol. 8, no 5, p. 624. - doi: 10.3390/microorganisms8050624.

31. Chee MS, Bankier AT, Beck S, Bohni R, Brown CM, Cerny R, Horsnell T, Hutchison CA 3rd, Kouzarides T, Martignetti JA, Barrell, B G. Analysis of the protein-coding content of the sequence of human cytomegalovirus strain AD169. Curr Top Microbiol Immunol, 1990, pp. 125-69. - doi: 10.1007/978-3-642-74980-3_6.

32. Chou SW, Scott KM. Rises in antibody to human herpesvirus 6 detected by enzyme immunoassay in transplant recipients with primary cytomegalovirus infection. Journal of clinical microbiology, 1990, vol. 28, no 5, pp. 851-854. - doi: 10.1128/JCM.28.5.851-854.1990.

33. Clark DA. Clinical and laboratory features of human herpesvirus 6 chromosomal integration. Clinical Microbiology and Infection, 2016, vol. 22, no 4, pp. 333-339. - doi: 10.1016/j.cmi.2015.12.022.

34. Corey L, Whitley RJ, Stone EF, Mohan K. Difference between herpes simplex virus type 1 and type 2 neonatal encephalitis in neurological outcome. Lancet, 1988, vol. 331, no 8575-8576, pp. 1-4. doi: 10.1016/s0140-6736(88)90997-x. - doi: 10.1016/s0140-6736(75)91074-0.

35. Cossart YE, Field AM, Cant B, Widdows D. Parvovirus-like particles in human sera. Lancet, 1975, vol. 305, no 7898, pp. 72-73. - doi: 10.1016/s0140-6736(75)91074-0.

36. Cotmore SF, Agbandje-McKenna M, Canuti M, Chiorini JA, Eis-Hubinger AM, Hughes J, Mietzsch M, Modha S, Ogliastro M, Pénzes JJ, Pintel DJ, Qiu J, Soderlund-Venermo M, Tattersall P, Tijssen P, Ictv Report Consortium. ICTV Virus Taxonomy Profile: Parvoviridae. The Journal of general virology, 2019, vol. 100, no 3, p. 367-368. - doi: 10.1099/jgv.0.001212.

37. Craig JM, MaCauley JC, Weller TH, Wirth P. Isolation of intranuclear inclusion producing agents from infants with illnesses resembling cytomegalic inclusion disease. Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine, 1957, vol. 94, no 1, pp. 4-12. - doi: 10.3181/00379727-94-22841.

38. Daibata M, Taguchi T, Taguchi H, Miyoshi I. Integration of human herpesvirus 6 in a Burkitt's lymphoma cell line. British journal of haematology, 1998, vol. 102, no 5, pp. 1307-13. - doi: 10.1046/j.1365-2141.1998.00903.x.

39. De Vries JJ, Wessels E, Korver AM, van der Eijk AA, Rusman LG, Kroes AC, Vossen AC. Rapid genotyping of cytomegalovirus in dried blood spots by multiplex real-time PCR assays targeting the envelope glycoprotein gB and gH genes. Journal of clinical microbiology, 2012, vol. 50, no 2, pp. 232-237. - doi: 10.1128/JCM.05253-11.

40. Depledge DP, Kundu S, Jensen NJ, Gray ER, Jones M, Steinberg S,Gershon A, Kinchington PR, Schmid DS, Balloux F, Nichols RA, Breuer J. Deep sequencing of viral genomes provides insight into the evolution and pathogenesis of varicella zoster virus and its vaccine in humans. Molecular biology and evolution. 2014, vol. 31, vol. 2., pp. 397-409. - https://doi.org/10.1093/molbev/mst210.27.

41. Ekman A, Hokynar K, Kakkola L, Kantola K, Hedman L, Bondén H, Gessner M, Aberham C, Norja P, Miettinen S, Hedman K, Söderlund-Venermo M. Biological and immunological relations among human parvovirus B19 genotypes 1 to 3. Journal of virology, 2007, vol. 81, no 13, pp. 6927-6935. - doi: 10.1128/JVI.02713-06.

42. Emery V.C. and Lazzarotto T. Cytomegalovirus in pregnancy and the neonate. F1000Research, 2017, vol. 6. - doi: 10.12688/f1000research.10276.1.

43. Enders G, Daiminger A, Bäder U, Exler S, Enders M. Intrauterine transmission and clinical outcome of 248 pregnancies with primary cytomegalovirus infection in relation to gestational age. Journal of Clinical Virology, 2011, vol. 52, no 3, pp. 244-246. - doi: 10.1016/j.jcv.2011.07.005.

44. Endo A, Watanabe K, Ohye T, Suzuki K, Matsubara T, Shimizu N, Kurahashi H, Yoshikawa T, Katano H, Inoue N, Imai K, Takagi M, Morio T, Mizutani S. Molecular and virological evidence of viral activation from chromosomally integrated human herpesvirus 6A in a patient with X-linked severe combined immunodeficiency. Clinical Infectious Diseases, 2014, vol. 59, no 4, pp. 545-548. - doi: 10.1093/cid/ciu323.

45. Fernandes ND, Arya K, Ward R. Congenital Herpes Simplex. StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing. 2021. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK507897/

46. Fields, BN., Byers K. The genetic basis of viral virulence. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. B, Biological Sciences, 1983, vol. 303, no 1114, pp. 209-218. - https://doi.org/10.1098/rstb.1983.0094.14.

47. Godet AN, Soignon G, Koubi H, Bonnafous P, Agut H, Poirot C, Gautheret-Dejean A. Presence of HHV-6 genome in spermatozoa in a context of couples with low fertility: what type of infection? Andrologia, 2015, vol. 47, no 5, pp. 531-5. - doi: 10.1111/and.12299.

48. Gonzalez-Scarano F, Beaty B, Sundin D, Janssen R, Endres MJ, Na-thanson N. Genetic determinants of the virulence and infectivity of La Crosse virus. Microbial pathogenesis, 1988, vol. 4, no 1, pp. 1–7. - https://doi.org/10.1016/0882-4010(88)90041-1.15.

49. Hubacek P, Hrdlickova A, Spacek M, Zajac M, Muzikova K, Sedlacek P, Cetkovsky P. Prevalence of chromosomally integrated HHV-6 in patients with malignant disease and healthy donors in the Czech Republic. Folia Microbiol (Praha), 2013, vol. 58, no 1, pp. 87-90. - doi: 10.1007/s12223-012-0180-z.

50. Jaan A, Rajnik M. TORCH Complex. In: StatPearls. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; July 21, 2020. - https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK560528/

51. Jain P, Jain A, Khan DN, Kumar M. Human parvovirus B19 associated dilated cardiomyopathy. BMJ Case Reports, 2013, bcr2013010410. - doi: 10.1136/bcr-2013-010410.

52. Jain P, Jain A, Prakash S, Khan DN, Singh DD, Kumar A, Moulik NR, Chandra T. Prevalence and genotypic characterization of human parvovirus B19 in children with hemato-oncological disorders in North India. Journal of medical virology, 2015, vol. 87, no 2, p. 303-309. - doi: 10.1002/jmv.24028.

53. James SH, Kimberlin DW. Neonatal herpes simplex virus infection: epidemiology and treatment. Clinics in perinatology. 2015, vol. 42, no 1, pp. 47-59. - doi: 10.1016/j.clp.2014.10.005.

54. James SH, Kimberlin DW. Neonatal Herpes Simplex Virus Infectious disease clinics of North America, 2015, vol. 29, no 3, pp. 391-400. - doi: 10.1016/j.idc.2015.05.001.

55. Kaufer BB, Flamand L. Chromosomally integrated HHV-6: impact on virus, cell and organismal biology. Current opinion in virology, 2014, vol. 9, pp. 111-118. - doi: 10.1016/j.coviro.2014.09.010.

56. Kimberlin DW, Lin CY, Jacobs RF, Powell DA, Frenkel LM, Gruber WC, Rathore M, Bradley JS, Diaz PS, Kumar M, Arvin AM, Gutierrez K, Shelton M, Weiner LB, Sleasman JW, de Sierra TM, Soong SJ, Kiell J, Lakeman FD, Whitley RJ; Natural history of neonatal herpes simplex virus infections in the acyclovir era. Pediatrics, 2001, vol. 108, no 2, pp. 223-9. - doi: 10.1542/peds.108.2.223.

57. Kreilmeier T, Mejri D, Hauck M, Kleiter M, Holzmann K. Telomere Transcripts Target Telomerase in Human Cancer Cells. Genes (Basel), 2016, vol. 7, no 8, p. 46. - doi: 10.3390/genes7080046.

58. Leong HN, Tuke PW, Tedder RS, Khanom AB, Eglin RP, Atkinson CE, Ward KN, Griffiths PD, Clark DA. The prevalence of chromosomally integrated human herpesvirus 6 genomes in the blood of UK blood donors. Journal of medical virology, 2007, vol. 79, no 1, pp. 45-51. - doi: 10.1002/jmv.20760.

59. Lindenburg IT, Smits-Wintjens VE, van Klink JM, Verduin E, van Kamp IL, Walther FJ, Schonewille H, Doxiadis II, Kanhai HH, van Lith JM, van Zwet EW, Oepkes D, Brand A, Lopriore E; LOTUS study group. Long-term neurodevelopmental outcome after intrauterine transfusion for hemolytic disease of the fetus/newborn: the LOTUS study. American journal of obstetrics and gynecology, 2012, vol. 206, no 2, pp. 141. e1-141. e8.-148. - doi: 10.1016/j.ajog.2011.09.024.

60. Looker, K.J., Magaret, A.S., May, M.T., Turner, K.M.E., Vickerman, P., Newman, L.M., Gottlieb, S.L First estimates of the global and regional incidence of neonatal herpes infection. The Lancet Global Health, 2017, vol. 5, no 3, pp. e300–e309. - doi:10.1016/s2214-109x(16)30362-x.

61. Luppi M, Barozzi P, Marasca R, Torelli G. Integration of human herpesvirus-6 (HHV-6) genome in chromosome 17 in two lymphoma patients. Leukemia, 1994, vol. 8, Suppl 1, pp. 41-45. - PMID: 8152302.

62. Luppi M, Marasca R, Barozzi P, Ferrari S, Ceccherini-Nelli L, Batoni G, Merelli E, Torelli G. Three cases of human herpesvirus-6 latent infection: integration of viral genome in peripheral blood mononuclear cell DNA. Journal of medical virology, 1993, vol. 40, no 1, pp. 44-52. - doi: 10.1002/jmv.1890400110.

63. Lurain NS, Kapell KS, Huang DD, Short JA, Paintsil J, Winkfield E, Benedict CA, Ware CF, Bremer JW. Human cytomegalovirus UL144 open reading frame: sequence hypervariability in low-passage clinical isolates. Journal of virology, 1999, vol. 73, no 12, pp. 10040-10050. - doi: 10.1128/JVI.73.12.10040-10050.1999.

64. Maisonneuve E, Garel C, Friszer S, Pénager C, Carbonne B, Pernot F, Rozenberg F, Schnuriger A, Cortey A, Moutard ML, Jouannic JM. Fetal Brain Injury Associated with Parvovirus B19 Congenital Infection Requiring Intrauterine Transfusion. Fetal diagnosis and therapy, 2019, vol. 46, no 1, pp. 1-11. - doi: 10.1159/000489881. Epub 2018 Jul 20.

65. Manandhar T, Hò GT, Pump WC, Blasczyk R, Bade-Doeding C. Battle between Host Immune Cellular Responses and HCMV Immune Evasion. International journal of molecular sciences, 2019, vol. 20, no 15, p. 3626. - doi: 10.3390/ijms20153626.

66. Manuel O, Asberg A, Pang X, Rollag H, Emery VC, Preiksaitis JK, Kumar D, Pescovitz MD, Bignamini AA, Hartmann A, Jardine AG, Humar A. Impact of genetic polymorphisms in cytomegalovirus glycoprotein B on outcomes in solid-organ transplant recipients with cytomegalovirus disease. Clinical Infectious Diseases, 2009, vol. 49, no 8, pp. 1160-1166. - doi: 10.1086/605633.

67. Mao H, Rosenthal KS. Strain-dependent structural variants ofherpes simplex virus type 1 ICP34.5 determine viral plaque size, effi-ciency of glycoprotein processing, and viral release and neuroinvasive disease potential. Journal of virology, 2003, vol. 77, no 6., pp. 3409–3417. - https://doi.org/10.1128/JVI.77.6.3409-3417.2003.23,24.

68. Martí-Carreras J, Maes P. Human cytomegalovirus genomics and transcriptomics through the lens of next-generation sequencing: revision and future challenges. Virus Genes, 2019, vol. 55, no 2, pp. 138-164. - doi: 10.1007/s11262-018-1627-3.

69. McSharry BP, Avdic S, Slobedman B. Human cytomegalovirus encoded homologs of cytokines, chemokines and their receptors: roles in immunomodulation. Viruses, 2012, vol. 4, no 11, pp. 2448-2470. - doi: 10.3390/v4112448.

70. Mercolini F, Verdi F, Eisendle K, Messner H, Staffler A. Congenital disseminated HSV-1 infection in preterm twins after primary gingivostomatitis of the mother: case report and review of the literature. Zeitschrift für Geburtshilfe und Neonatologie. 2014, vol. 218, no 06, pp. 261-264. - doi: 10.1055/s-0034-1385854.

71. Michou V, Liarmakopoulou S, Thomas D, Tsimaratou K, Makarounis K, Constantoulakis P, Angelopoulou R, Tsilivakos V. Herpes virus infected spermatozoa following density gradient centrifugation for IVF purposes. Andrologia, 2012, vol. 44, no 3, pp. 174-180. - doi: 10.1111/j.1439-0272.2010.01121.x.

72. Miura H, Kawamura Y, Hattori F, Kozawa K, Ihira M, Ohye T, Kurahashi H, Yoshikawa T. Chromosomally integrated human herpesvirus 6 in the Japanese population. Journal of medical virology, 2018, vol. 90, no 10, pp. 1636-1642. - doi: 10.1002/jmv.25244.

73. Mühlemann B, Margaryan A, Damgaard PB, Allentoft ME, Vinner L, Hansen AJ, Weber A, Bazaliiskii VI, Molak M, Arneborg J, Bogdanowicz W, Falys C, Sablin M, Smrčka V, Sten S, Tashbaeva K, Lynnerup N, Sikora M, Smith DJ, Fouchier RAM, Drosten C, Sjögren KG, Kristiansen K, Willerslev E, Jones TC. Ancient human parvovirus B19 in Eurasia reveals its long-term association with humans. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2018, vol. 115, no 29, pp. 7557-7562. - doi: 10.1073/pnas.1804921115.

74. Müller V, Fraser C, Herbeck JT. A strong case for viral geneticfactors in HIV virulence. Viruses, 2011, vol. 3, no 3, pp. 204–216. - https://doi.org/10.3390/v3030204.17.

75. Murayama T, Takegoshi M, Tanuma J, Eizuru Y. Analysis of human cytomegalovirus UL144 variability in low-passage clinical isolates in Japan. Intervirology, 2005, vol. 48, no 2-3, pp. 201-206. - doi: 10.1159/000081749.

76. Mussi-Pinhata MM, Yamamoto AY, Aragon DC, Duarte G, Fowler KB, Boppana S, Britt WJ. Seroconversion for cytomegalovirus infection during pregnancy and fetal infection in a highly seropositive population: "The brachs study". The Journal of infectious diseases, 2018, vol. 218, no 8, pp. 1200-1204. - doi: 10.1093/infdis/jiy321.

77. Naing Z, Hamilton ST, van Zuylen WJ, Scott GM, Rawlinson WD. Differential Expression of PDGF Receptor-α in Human Placental Trophoblasts Leads to Different Entry Pathways by Human Cytomegalovirus Strains. Scientific reports, 2020, vol. 10, no 1, p.1082. - doi: 10.1038/s41598-020-57471-3.

78. Nelson JA, Fleckenstein B, Jahn G, Galloway DA, McDougall JK. Structure of the transforming region of human cytomegalovirus AD169. Journal of virology, 1984, vol. 49, no 1, pp. 109-115. - doi: 10.1128/JVI.49.1.109-115.1984.

79. Nijman J, Mandemaker FS, Verboon-Maciolek MA, Aitken SC, van Loon AM, de Vries LS, Schuurman R. Genotype distribution, viral load and clinical characteristics of infants with postnatal or congenital cytomegalovirus infection. PLoS One, 2014, vol. 9, no 9, p. e108018. - doi: 10.1371/journal.pone.0108018.

80. Novak Z, Ross SA, Patro RK, Pati SK, Kumbla RA, Brice S, Boppana SB. Cytomegalovirus strain diversity in seropositive women. Journal of clinical microbiology, 2008, vol. 46, no 3, pp. 882-886. - doi: 10.1128/JCM.01079-07.

81. Pantry SN, Medveczky MM, Arbuckle JH, Luka J, Montoya JG, Hu J, Renne R, Peterson D, Pritchett JC, Ablashi DV, Medveczky PG. Persistent human herpesvirus-6 infection in patients with an inherited form of the virus. Journal of medical virology, 2013, vol. 85, no 11, pp. 1940-1946. - doi: 10.1002/jmv.23685.

82. Pantry SN, Medveczky PG. Latency, Integration, and Reactivation of Human Herpesvirus-6. Viruses, 2017, vol. 9, no 7, p. 194. - doi: 10.3390/v9070194.

83. Paradowska E, Studzińska M, Nowakowska D, Wilczyński J, Rycel M, Suski P, Gaj Z, Kaczmarek B, Zbróg Z, Leśnikowski ZJ. Distribution of UL144, US28 and UL55 genotypes in Polish newborns with congenital cytomegalovirus infections. European journal of clinical microbiology & infectious diseases, 2012, vol. 31, no 7, pp. 1335-1345. - doi: 10.1007/s10096-011-1447-z.

84. Pellett PE, Ablashi DV, Ambros PF, Agut H, Caserta MT, Descamps V, Flamand L, Gautheret-Dejean A, Hall CB, Kamble RT, Kuehl U, Lassner D, Lautenschlager I, Loomis KS, Luppi M, Lusso P, Medveczky PG, Montoya JG, Mori Y, Ogata M, Pritchett JC, Rogez S, Seto E, Ward KN, Yoshikawa T, Razonable RR. Chromosomally integrated human herpesvirus 6: questions and answers. Reviews in medical virology, 2012, vol. 22, no 3, pp. 144-155. - doi: 10.1002/rmv.715.

85. Pickett BE, Sadat EL, Zhang Y, Noronha JM, Squires RB, Hunt V, Liu M, Kumar S, Zaremba S, Gu Z, Zhou L, Larson CN, Dietrich J, Klem EB, Scheuermann RH. ViPR: an open bioinformatics database and analysis resource for virology research. Nucleic acids research, 2012, vol. Т. 40, no D1, pp. D593-D598. - doi: 10.1093/nar/gkr859.

86. Pignatelli S, Lazzarotto T, Gatto MR, Dal Monte P, Landini MP, Faldella G, Lanari M. Cytomegalovirus gN genotypes distribution among congenitally infected newborns and their relationship with symptoms at birth and sequelae. Clinical Infectious Diseases, 2010, vol. 51, no 1, pp. 33-41. - doi: 10.1086/653423.

87. Pinninti SG, Kimberlin DW. Management of neonatal herpes simplex virus infection and exposure. Archives of Disease in Childhood - Fetal and Neonatal Edition. 2014, vol. 99, no 3, pp. 240-244. - doi: 10.1136/archdischild-2013-303762.

88. Plummer FA, Hammond GW, Forward K, Sekla L, Thompson LM, Jones SE, Kidd IM, Anderson MJ. An erythema infectiosum-like illness caused by human parvovirus infection. New England Journal of Medicine, 1985, vol. 313, no 2, p. 74-79. - doi: 10.1056/NEJM198507113130203.

89. Renner DW, Szpara ML. The impacts of genome-wide analyses on our understanding of human herpesvirus diversity and evolution. Journal of virology. 2018, vol. 92, no 1. - https://doi.org/10.1128/JVI.00908-17.25–27.

90. Renzette N, Gibson L, Jensen JD, Kowalik TF. Human cytomegalovirus intrahost evolution — a new avenue for understanding and controlling herpesvirus infections. Current opinion in virology, 2014, vol. 8, pp. 109-115. - https://doi.org/10.1016/j.coviro.2014.08.001.26

91. Revello MG, Campanini G, Piralla A, Furione M, Percivalle E, Zavattoni M, Gerna G. Molecular epidemiology of primary human cytomegalovirus infection in pregnant women and their families. Journal of medical virology, 2008, vol. 80, no 8, pp. 1415-1425. - doi: 10.1002/jmv.21243. PMID: 18551604.

92. Ribbert H. Ueber protozoenartige Zellen in der Niere eines syphilitischen Neugeborenen und in der Parotis von Kindern. Zbl Allg Pathol, 1904, vol. 15, pp. 945-948. -

93. Rinckel LA, Buno BR, Gierman TM, Lee DC. Discovery and analysis of a novel parvovirus B19 Genotype 3 isolate in the United States. Transfusion, 2009, vol. 49, no 7, pp. 1488-1492. - doi: 10.1111/j.1537-2995.2009.02160.x.

94. Robinson CM, Jesudhasan PR, Pfeiffer JK. Bacterial lipopolysac-charide binding enhances virion stability and promotes environmentalfitness of an enteric virus. Cell host & microbe, 2014, vol. 15, no 1, pp. 36–46. - https://doi.org/10.1016/j.chom.2013.12.004.13–18.

95. Rowe WP, Hartley JW, Waterman S, Turner HC, Huebner RJ. Cytopathogenic agent resembling human salivary gland virus recovered from tissue cultures of human adenoids. Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine, 1956, vol. 92, no 2, pp. 418-424. - https://doi.org/10.3181%2F00379727-92-22497.

96. Sakaoka H, Kawana T, Grillner L, Aomori T, Yamiguchi T, Saito H, Fujinaga K. Genome variations in herpes simplex virus type 2strains isolated in Japan and Sweden. Journal of general virology, 1987, vol. 68, no 8, pp. 2105-2116. - https://doi.org/10.1099/0022-1317-68-8-2105.21.

97. Sakaoka H, Kurita K, Iida Y, Takada S, Umene K, Kim YT, Ren CS, NahmiasAJ. Quantitative analysis of genomic polymorphism of herpes simplex virus type 1 strains from six countries: studies of molecular evolution and molecular epidemiology of the virus. Journal of general virology 1994, vol. 75, no 3, pp. 513–527. - https://doi.org/10.1099/0022-1317-75-3-513.22.

98. Salbetti MB, Pedranti MS, Barbero P, Molisani P, Lazzari M, Olivera N, Isa MB, Bertoldi A, Moreno L, Adamo MP. Molecular screening of the human parvoviruses B19 and bocavirus 1 in the study of congenital diseases as applied to symptomatic pregnant women and children. Access Microbiology, 2019, vol. 1, no 5, p. e000037. - doi: 10.1099/acmi.0.000037.

99. Sanabani S, Neto WK, Pereira J, Sabino EC. Sequence variability of human erythroviruses present in bone marrow of Brazilian patients with various parvovirus B19-related hematological symptoms. Journal of clinical microbiology, 2006, vol. 44, no 2, pp. 604-606. - doi: 10.1128/JCM.44.2.604-606.2006.

100. Sénat MV, Anselem O, Picone O, Renesme L, Sananès N, Vauloup-Fellous C, Sellier Y, Laplace JP, Sentilhes L. Prevention and management of genital herpes simplex infection during pregnancy and delivery: Guidelines from the French College of Gynaecologists and Obstetricians (CNGOF). European Journal of Obstetrics & Gynecology and Reproductive Biology, 2018, vol. 224, pp. 93-101. - doi: 10.1016/j.ejogrb.2018.03.011.

101. Servant A, Laperche S, Lallemand F, Marinho V, De Saint Maur G, Meritet JF, Garbarg-Chenon A. Genetic diversity within human erythroviruses: identification of three genotypes. Journal of virology, 2002, vol. 76, no 18, p. 9124-9134. - doi: 10.1128/jvi.76.18.9124-9134.2002.

102. Sharma S, Wisner TW, Johnson DC, Heldwein EE. HCMV gB shares structural and functional properties with gB proteins from other herpesviruses. Virology, 2013, vol. 435, no 2, pp. 239-249. - doi: 10.1016/j.virol.2012.09.024.

103. Slavov SN, Kashima S, Silva-Pinto AC, Covas DT. Genotyping of Human parvovirus B19 among Brazilian patients with hemoglobinopathies. Canadian journal of microbiology, 2012, vol. 58, no 2, pp. 200-205. - doi: 10.1139/w11-119.

104. Smith MG. Propagation in tissue cultures of a cytopathogenic virus from human salivary gland virus (SGV) disease. Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine, 1956, vol. 92, no 2, pp. 424-430. - doi: 10.3181/00379727-92-22498.

105. Sowmya P, Dhanya V, Madhavan HN, Therese KL. Comparative efficacy of PCR-based restriction fragment length polymorphism (RFLP) & multiplex PCR for glycoprotein B (gB) genotyping of human cytomegalovirus. Indian Journal of Medical Research, 2007, vol. 126, no 2, pp. 122-127. - PMID: 17932436

106. Staras SA, Dollard SC, Radford KW, Flanders WD, Pass RF, Cannon MJ. Seroprevalence of cytomegalovirus infection in the United States, 1988-1994. Clinical Infectious Diseases, 2006, vol. 43, no 9, pp. 1143-1151. - doi: 10.1086/508173.

107. Stranska R, Schuurman R, Toet M, Verboon-Maciolek M, de Vries LS, van Loon AM. Application of UL144 molecular typing to determine epidemiology of cytomegalovirus infections in preterm infants. Journal of clinical microbiology, 2006, vol. 44, no 3, pp. 1108-1110. - doi: 10.1128/JCM.44.3.1108-1110.2006.

108. Tanaka-Taya K, Sashihara J, Kurahashi H, Amo K, Miyagawa H, Kondo K, Okada S, Yamanishi K. Human herpesvirus 6 (HHV-6) is transmitted from parent to child in an integrated form and characterization of cases with chromosomally integrated HHV-6 DNA. Journal of medical virology, 2004, vol. 73, no 3, pp. 465-473. - doi: 10.1002/jmv.20113.

109. Telford M, Navarro A, Santpere G. Whole genome diversity of inherited chromosomally integrated HHV-6 derived from healthy individuals of diverse geographic origin. Scientific reports, 2018, vol. 8, no 1, p. 3472. - doi: 10.1038/s41598-018-21645-x.

110. Trincado DE, Scott GM, White PA, Hunt C, Rasmussen L, Rawlinson WD. Human cytomegalovirus strains associated with congenital and perinatal infections. Journal of medical virology, 2000, vol. 61, no 4, pp. 481-487. - doi: 10.1002/1096-9071(200008)61:4<481::aid-jmv11>3.0.co;2-h.

111. Tscherne DM, García-Sastre A. Virulence determinants of pan-demic influenza viruses. The Journal of clinical investigation, 2011, vol. 121, no 1, pp. 6-13. - https://doi.org/10.1172/JCI44947.16.

112. Wang C, Zhao L, Lu S. Role of TERRA in the regulation of telomere length. International journal of biological sciences, 2015, vol. 11, no 3, pp. 316-323. - doi: 10.7150/ijbs.10528.

113. Waring GJ. Parvovirus B19 infection: Timely diagnosis in pregnancy essential. Case reports in women's health, 2018, vol. 18, p. e00057. - doi: 10.1016/j.crwh.2018.e00057.

114. Warnecke JM, Pollmann M, Borchardt-Lohölter V, Moreira-Soto A, Kaya S, Sener AG, Gómez-Guzmán E, Figueroa-Hernández L, Li W, Li F, Buska K, Zakaszewska K, Ziolkowska K, Janz J, Ott A, Scheper T, Meyer W. Seroprevalences of antibodies against TORCH infectious pathogens in women of childbearing age residing in Brazil, Mexico, Germany, Poland, Turkey and China. Epidemiol Infect, 2020, vol. 30, no 148, p. e271. - doi: 10.1017/S0950268820002629.

115. Whitley, R., Arvin, A., Prober, C., Burchett, S., Corey, L., Powell, D., Plotkin, S., Starr, S., Alford, C., Connor, J., Jacobs, R., Nahmias, A., Soong, S.-J. A Controlled Trial Comparing Vidarabine with Acyclovir in Neonatal Herpes Simplex Virus Infection. New England Journal of Medicine, 1991. Vol. 324, no 7, pp. 444–449. - doi:10.1056/nejm199102143240703.

116. Whitley, R., Arvin, A., Prober, C., Corey, L., Burchett, S., Plotkin, S., Starr, S., Jacobs, R., Powell, D., Nahmias, A., Sumaya, C., Edwards, K., Alford, C., Caddell, G., Soong, S.-J. Predictors of Morbidity and Mortality in Neonates with Herpes Simplex Virus Infections. New England Journal of Medicine, 1991, vol. 324, no 7, pp. 450-454. - doi: 10.1056/NEJM199102143240704.

117. Xiong YQ, Tan J, Liu YM, He Q, Li L, Zou K, Sun X. The risk of maternal parvovirus B19 infection during pregnancy on fetal loss and fetal hydrops: A systematic review and meta-analysis. Journal of Clinical Virology, 2019, no 114, p. 12-20. - doi: 10.1016/j.jcv.2019.03.004.

118. Yan H, Koyano S, Inami Y, Yamamoto Y, Suzutani T, Mizuguchi M, Ushijima H, Kurane I, Inoue N. Genetic variations in the gB, UL144 and UL149 genes of human cytomegalovirus strains collected from congenitally and postnatally infected Japanese children. Archives of virology, 2008, vol. 153, no 4, pp. 667-674. - doi: 10.1007/s00705-008-0044-7.

119. Zhi N, Zádori Z, Brown KE, Tijssen P. Construction and sequencing of an infectious clone of the human parvovirus B19. Virology, 2004, vol. 318, no 1, pp. 142-152. - doi: 10.1016/j.virol.2003.09.011.

120. Zuhair, M., Smit, G.S.A., Wallis, G., Jabbar, F., Smith, C., Devleesschauwer, B., Griffiths, P. Estimation of the worldwide seroprevalence of cytomegalovirus: A systematic review and meta-analysis. Reviews in Medical Virology, 2019, vol. 29, no 3, pp. e2034. - doi:10.1002/rmv.2034.


Дополнительные файлы

1. Метаданные
Тема врожденные инфекции, внутриутробные инфекции, беременность, дети, новорожденные, антенатальная смертность, неонатальная смертность, вирус простого герпеса 1,2 типа, вирус герпеса человека 6 типа, цитомегаловирус, парвовирус В19.
Тип Прочее
Скачать (15KB)    
Метаданные
2. Титульный лист
Тема
Тип Прочее
Скачать (17KB)    
Метаданные
3. Резюме
Тема
Тип Прочее
Скачать (16KB)    
Метаданные

Для цитирования:


Гринева А.А., Васильев В.В., Рогозина Н.В. Молекулярно-генетические и клинические аспекты социально-значимых вирусов в реализации врожденных заболеваний. Инфекция и иммунитет. 2020;. https://doi.org/10.15789/2220-7619-MGA-1729

Просмотров: 7


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2220-7619 (Print)
ISSN 2313-7398 (Online)