Отечественный агар Мюллера-Хинтон: соответствие современным требованиям
Аннотация
Об авторах
Л. В. ДомотенкоРоссия
Домотенко Любовь Викторовна, кандидат химических наук, ведущий научный сотрудник лаборатории разработки питательных сред
Адрес для переписки: Домотенко Любовь Викторовна 142279, Россия, Московская область, Серпуховский район, п. Оболенск, ГНЦ прикладной микробиологии и биотехнологии. Тел./факс: 8 (916) 334-55-26
И. С. Косилова
Россия
Косилова Ирина Сергеевна, младший научный сотрудник лаборатории разработки питательных сред
А. П. Шепелин
Россия
Шепелин Анатолий Прокопьевич, доктор биологических наук, зам. директора по научно-производственной деятельности
Список литературы
1. Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам: Методические указания (МУК 4.12.1890-04). М.: Федеральный центр госсанэпиднадзора Минздрава России, 2004. 91 с.
2. Определение чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам. Клинические рекомендации. 206 с. Версия 2018-03. URL: http://www.antibiotic.ru/minzdrav/files/docs/clrec-dsma2018.pdf (22.05.2019)
3. Решедько Г.К., Cтецюк О.У. Особенности определения чувствительности микроорганизмов диско-диффузионным методом //Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2001. № 4. С. 348–354.
4. Шепелин А.П., Морозова Т.П., Косилова И.С., Глазкова Г.П., Домотенко Л.В. Оценка качества питательных сред для определения чувствительности к антибактериальным препаратам //Дезинфекция. Антисептика. 2013. № 1. С. 43–48.
5. Andrews J., Walker R., King A. Evaluation of media available for testing the susceptibility of Pseudomonas aeruginosa by BSAC methodology. J. Antimicrob. Chemother., 2002, vol. 50, no. 4, pp. 479–486.
6. Cooke P., Heritage J., Kerr K., Hawkey P.M. Kenneth E. Different effects of zinc ions on in vitro susceptibilities of Stenotrophomonas maltophilia to Imipenem and Meropenem. Antimicrob. Agents Chemother., 1996, vol. 40, no. 12, pp. 2909–2910.
7. Daly J.S., Dodge R.A., Glew R.H., Soja D.T., Deluca B.A., Hebert S. Effect of zinc concentration in Mueller-Hinton agar on susceptibility of Pseudomonas aeruginosa to Imipenem. J. Clin. Microbiol., 1997, vol. 35, no. 4, pp. 1027–1029.
8. Fernandez-Mazarrasa C., Mazarrasa O., Calvo J., del Arco A., Martínez-Martínez L.J. High concentrations of manganese in Mueller-Hinton agar increase MICs of tigecycline determined by Etest. J. Clin. Microbiol., 2009, vol. 47, no. 3, pp. 827–829.
9. Girardello P.J., Bispo M., Yamanaka T.M., Galesa A.C. Cation concentration variability of four distinct Mueller-Hinton agar brands influences polymyxin B susceptibility results. J. Clin. Microbiol., 2012, vol. 50, no. 7, pp. 2414–2418.
10. Matuschek E., Brown D.F.J., Kahlmeter G. Development of the EUCAST disk diffusion antimicrobial susceptibility testing method and its implementation in routine microbiology laboratories. Clin. Microbiol. Infect., 2014, vol. 20, no. 4, pp. 255–266.
11. Mueller J.H., Hinton J. A protein-free medium for isolation of Gonococcus and Meningococcus. Proc. Soc. Exp. Biol. Med., 1941, vol. 48, no. 1, pp. 330–333.
12. Thamlikitkul V., Tiengrim S. Effect of different Mueller–Hinton agars on tigecycline disc diffusion susceptibility for Acinetobacter spp. J. Antimicrob. Chemother., 2008, vol. 62, no. 4, pp. 847–848.
13. Veenemans J., Mouton J.W., Kluytmans J.A.J.W., Donnely R., Verhulst C., van Keulen P.H.J. Effect of manganese in test media on in vitro susceptibility of Enterobacteriaceae and Acinetobacter baumannii to tigecycline. J. Clin. Microbiol., 2012, vol. 50, no. 9, pp. 3077–3079.
Для цитирования:
Домотенко Л.В., Косилова И.С., Шепелин А.П. Отечественный агар Мюллера-Хинтон: соответствие современным требованиям. Инфекция и иммунитет. 2019;9(2):409-416. https://doi.org/10.15789/2220-7619-2019-2-409-416
For citation:
Domotenko L.V., Kosilova I.S., Shepelin A.P. Russia-made Mueller–Hinton agar: compliance with contemporary requirements. Russian Journal of Infection and Immunity. 2019;9(2):409-416. (In Russ.) https://doi.org/10.15789/2220-7619-2019-2-409-416