Preview

Инфекция и иммунитет

Расширенный поиск

РОЛЬ РЕЦЕПТОРОВ ВРОЖДЕННОГО ИММУНИТЕТА (TLRs) В ПОДДЕРЖАНИИ ГОМЕОСТАЗА ГЕНИТАЛЬНОГО ТРАКТА ЖЕНЩИН, В РАЗВИТИИ БЕРЕМЕННОСТИ И ПРИ ВНУТРИУТРОБНОЙ ИНФЕКЦИИ

https://doi.org/10.15789/2220-7619-2018-3-251-262

Полный текст:

Аннотация

Целью представленного систематического обзора литературы является обобщение данных о роли TLRs в поддержании гомеостаза гениталий женщин, физиологического развития беременности, в обеспечении антиинфекционной резистентности беременных с внутриутробной инфекцией. Обоснована значимость TLRs гениталий женщин как необходимого и определяющего фактора в реакции на различные изменения в окружающей среде, а также в ответе за изменения в метаболизме, структурном или энергетическом, в поддержании антиинфекционной резистентности и гомеостаза. Являясь универсальными регуляторами жизнедеятельности организма, TLRs, совместно с другими рецепторами врожденного иммунитета, обеспечивают поддержание общей реактивности и антиинфекционной резистентности на физиологическом уровне. При физиологически развивающейся беременности на фоне иммунодепрессии в ответ на беременность TLRs при контакте с инфекционными и неинфекционными патогенами стимулируют выработку неспецифических факторов адаптивного иммунитета (дефензины, кателицидины и гистатины и др.), которые совместно с врожденными неспецифическими факторами лизоцимом, комплементом, пропердином и др. поддерживают антиинфекционную резистентность гениталий женщин на высоком уровне в начале инфекционного процесса. Возможные нарушения развитии беременности могут сопровождаться изменениями реакции TLRs на инфекционные и неинфекционные факторы вплоть до гиперреакции, чрезмерным воспалительным процессом или апоптозом клеток, что требует адекватного ведения беременности. При внутри утробной инфекции установлена значимость влияния патогенов инфекционного и неинфекционного генеза опосредованно через TLRs на гомеостаз организма, на формирование нарушений в антиинфекционной резистентности на организменном и местном уровнях с выявлением новых патофизиологических и иммунологических патогенетических механизмов развития патологических процессов. Инфекция является одним из основных факторов, оказывающих влияние на изменение экспрессии TLRs во внутриутробном и постанатальном периодах развития. ВУИ представляет собой проникновение микроорганизмов в ткани плода и его заражение. При этом угнетение функциональной активности TLRs сопровождается непосредственным воздействием патогена на ткани, а при гиперреакции TLRs на патогены выявляется выраженная воспалительная реакция у плода. Уровень экспрессии TLRs прямо коррелирует с тяжестью процесса, что позволяет рассматривать их как ранние маркеры инфекции. В зависимости от природы патогена наблюдается усиление экспрессии того или иного TLRs. Объективизируются объяснения отсутствия симптоматики, возможность атипичных проявлений, бессимптомного течения инфекции.

Об авторах

А. В. Караулов
ФГБОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова МЗ РФ.
Россия

академик РАН, д.м.н., профессор, зав. кафедрой клинической аллергологии и иммунологии.

Москва.


С. С. Афанасьев
ФБУН Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора.
Россия

д.м.н., профессор, главный научный сотрудник.

Москва.


В. А. Алешкин
ФБУН Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора.
Россия

д.б.н., профессор, директор.

Москва.



Н. Л. Бондаренко
ФГБОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова МЗ РФ.
Россия

к.м.н., доцент кафедры клинической аллергологии и иммунологии.

Москва.


Е. А. Воропаева
ФБУН Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора.
Россия

д.б.н., зам. директора.

Москва.



М. С. Афанасьев
ФГБОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова МЗ РФ.
Россия

д.м.н., профессор кафедры клинической аллергологии и иммунологии.

Москва.


Ю. В. Несвижский
ФГБОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова МЗ РФ.
Россия

д.м.н., профессор, декан медико-профилактического факультета.

Москва.


О. Ю. Борисова
ФБУН Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора.
Россия

д.м.н., доцент, руководитель лаборатории диагностики дифтерийной и коклюшной инфекций.

125212, Россия, Москва, ул. Адмирала Макарова, 10.

Тел.: 8 (499) 747-64-84 (служебн.); 8 916 147-19-60 (моб.).

Факс: 8 (495) 452-18-30.



А. В. Алешкин
ФБУН Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора.
Россия

д.б.н., МВА, руководитель лаборатории клинической микробиологии и биотехнологии бактериофагов.

Москва.


Ю. Н. Урбан
ФБУН Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора.
Россия

к.б.н., научный сотрудник лаборатории клинической микробиологии и биотехнологии.

Москва.


А. Б. Борисова
ФБУН Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора.
Россия

младший научный сотрудник лаборатории диагностики дифтерийной и коклюшной инфекций.

Москва.


А. Д. Воропаев
ФБУН Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора.
Россия

младший научный сотрудник лаборатории клинической микробиологии и биотехнологии.

Москва.


Список литературы

1. Абрамченко В.В. Классическое акушерство. Книга вторая. СПб.: Нордмедиздат, 2008. 879 с.

2. Алешкин В.А., Ложкина А.Н., Загородняя Э.Д. Иммунология репродукции: пособие для врачей, ординаторов и научных работников. Чита: 2004. 79 с.

3. Аллергология. Федеральные клинические рекомендации. Под ред. Р.М. Хаитова, Н.И. Ильиной. М.: Фармарус Принт Медиа, 2014. 126 с.

4. Бочарова И.И., Новикова С.В., Дмитриева Е.В., Паршина О.В., Гусева Т.С. Интерферонотерапия при урогенитальных инфекциях // Вестник «Ферона». 2013. № 1. С. 13–16.

5. Буданов П.В., Стрижаков А.Н. Этиология, патогенез, диагностика и лечение внутриутробной инфекции // Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2010. Т. 9, № 3. С. 61–71.

6. Ванько Л.В., Сафронова В.Г., Матвеева Н.К., Сухих Г.Т. Оксидативный стресс в генезе акушерских осложнений. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2010. 264 с.

7. Ганковская О.А., Ковальчук Л.В., Ганковская Л.В., Лавров В.Ф., Романовская В.В., Карташов Д.Д., Фензелева В.А. Роль Толл-подобных рецепторов и дефенсинов в противомикробной защите урогенитального тракта женщин // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2008. № 1. С. 46–50.

8. Ганковская Л.В., Ковальчук Л.В., Макаров О.В., Ганковская О.А., Акимова Е.А. Роль экспрессии генов Toll-подобного рецептора 2, каспаз и их ингибиторов в ткани плаценты в норме и при преждевременных родах инфекционного генеза // Российский иммунологический журнал. 2010. Т. 4, № 1 (13). С. 48–53.

9. Джобава Э.М., Степанян А.В., Артизанова Д.П., Бояр Е.А., Хейдар Л.Х., Доброхотова Ю.Э. Современное обоснование к возможности терапии вагинальных дисбиозов во время беременности // Гинекология. 2009. Т. 11, № 1. С. 79–82.

10. Инфекции в акушерстве и гинекологии. Под ред. Макарова О.В., Алешкина В.А., Савченко Т.Н. М.: МЕДпресс-информ, 2009. 464 с.

11. Ковальчук Л.В., Ганковская Л.В., Мешкова Р.Я. Клиническая иммунология и аллергология с основами общей иммунологии. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2011. 639 с.

12. Крыжановская М.В. Роль инфекционного фактора в развитии преждевременных родов // Медико-соціальні проблеми сім’ї. 2011. Т. 16, № 1. С. 104–107.

13. Макаров О.В., Бахарева И.В., Ковальчук Л.В., Ганковская Л.В., Романовская В.В., Ганковская О.А. Toll-подобные рецепторы как маркеры осложнений беременности // Аллергология и иммунология. 2007. Т. 8, № 3. С. 236.

14. Макаров О.В., Ковальчук Л.В., Ганковская Л.В., Бахарева И.В., Ганковская О.А. Невынашивание беременности, инфекция, врожденный иммунитет. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. 176 c.

15. Макаров О.В., Ганковская Л.В., Ковальчук Л.В., Бахарева И.В., Романовская В.В., Ганковская О.А. Прогностическое значение компонентов врожденного иммунитета у беременных с высоким риском реализации внутриутробной инфекции // Вестник Российского государственного медицинского университета. 2009. № 4. C. 27–33.

16. Макацария А.Д., Бицадзе В.О., Акиньшина С.В. Синдром системного воспалительного ответа в акушерстве. М.: Медицинское информационное агентство, 2006. 442 с.

17. Микробиоценозы и здоровье человека. Под ред. Алешкина В.А., Афанасьева С.С., Караулова А.В. М.: Издательство «Династия», 2015. 548 с.

18. Новое в физиологии мукозального иммунитета. Под ред. Караулова А.В., Алешкина В.А., Афанасьева С.С., Несвижского Ю.В. М.: Издательство Первого Московского государственного медицинского университета им. И.М. Сеченова, 2015. 168 с.

19. Рюмина И.И., Зубков В.В., Евтеева Н.В. Профилактика, диагностика и лечение омфалита у новорожденных // Акушерство и гинекология. 2012. № 5. С. 68–74.

20. Селихова М.С., Кузнецова О.А., Вдовин С.В., Дмитриенко Г.В. Роль эндотоксемии и механизмов врожденного иммунитета в патогенезе неразвивающейся беременности // Вестник Волгоградского государственного медицинского университета. 2012. № 1. С. 18–20.

21. Серебренникова С.Н., Семинский И.Ж. Роль цитокинов в воспалительном процессе (сообщение 2) // Сибирский медицинский журнал (Иркутск). 2008. Т. 83, № 8. С. 5–8.

22. Тирская Ю.И., Белкова Т.Н., Рудакова Е.Б., Долгих Т.И., Шакина И.А. Врачебная тактика при внутриутробных инфекциях // Акушерство и гинекология. 2011. № 8. С. 42–47.

23. Щебляков Д.В., Логунов Д.Ю., Тухватулин А.И., Шмаров М.М., Народицкий Б.С., Гинцбург А.Л. Тoлл-подобные рецепторы (TLR) и их значение в опухолевой прогрессии // Acta Naturae (русскоязычная версия). 2010. Т. 2, № 3 (6). С. 28–37.

24. Aboussahoud W., Bruce C., Elliott S., Fazeli A. Activation of Toll-like receptor 5 decreases the attachment of human trophoblast cells to endometrial cells in vitro. Hum. Reprod., 2010, vol. 25, no. 9, pp. 2217–2228. doi: 10.1093/humrep/deq185

25. Abrahams V.M., Aldo P.B., Murphy S.P., Visintin I., Koga K., Wilson G., Romero R., Sharma S., Mor G. TLR6 modulates first trimester trophoblast responses to peptidoglycan. J. Immunol., 2008, vol. 180, no. 9, pp. 6035–6043. doi: 10.4049/jimmunol.180.9.6035

26. Abrahams V.M., Bole Aldo P., Kim Y.M., Straszewski-Chavez S.L., Chaiworapongsa T., Romero R., Mor G. Divergent trophoblast responses to bacterial products mediated by TLRs. J. Immunol., 2004, vol. 173, no. 7, pp. 4286–4296. doi: 10.4049/jimmunol.173.7.4286

27. Abrahams V.M., Mor G. Toll-like receptors and their role in the trophoblast. Placenta, 2005, vol. 26, no. 7, pp. 540–547. doi: 10.1016/j.placenta.2004.08.010

28. Boldenow E., Jones S., Lieberman R.W., Chames M.C., Aronoff D.M., Xi C., Loch-Caruso R. Antimicrobial peptide response to group B Streptococcus in human extraplacental membranes in culture. Placenta, 2013, vol. 34, no. 6, pp. 480–485. doi: 10.1016/j.placenta.2013.02.010

29. Caballero I., Al Ghareeb S., Basatvat S., Sanchez-Lopez J.A., Montazeri M., Maslehat N., Elliott S., Chapman N.R., Fazeli A. Human trophoblast cells modulate endometrial cells nuclear factor kB response to flagellin in vitro. PLoS One, 2013, vol. 8, no. 1: e39441. doi: 10.1371/journal.pone.0039441

30. Canavan T.P., Simhan H.N. Innate immune function of the human decidual cell at the maternal-fetal interface. J. Reprod. Immunol., 2007, vol. 74, no. 1–2, pp. 46–52. doi: 10.1016/jjri.2006.10.004

31. Chen Y.P., Pfab Т., Slowinski Т., Richter C.M., Godes M., Hocher B. Impact of genetic variation of tumor necrosis factor-alpha on gestational hypertention. Clin. Med. J. (Engl.), 2006, vol. 119, no. 9, pp. 719–724.

32. Crocker I.P., Baker P.N., Fletcher J. Neutrophil function in pregnancy and rheumatoid arthritis. Ann. Rheum. Dis., 2000, vol. 59, no. 7, pp. 555–564.

33. Darville T., O’Neill J.M., Andrews C.W. Jr., Nagarajan U.M., Stahl L., Ojcius D.M. Toll-like receptor-2, but not toll-like receptor- 4, is essential for development of oviduct pathology in chlamydial genital tract infection. J. Immunol., 2003, vol. 171, no. 11, pp. 6187–6197. doi: 10.4049/jimmunol.171.11.6187

34. Den Hartog J.E., Morre S.A., Land J.A. Chlamydia trachomatis-associated tubal factor subfertility: immunogenetic aspects and serological screening. Hum. Reprod. Update, 2006, vol. 12, no. 6, pp. 719–730. doi: 10.1093/humupd/dml030

35. Den Hartog J.E., Ouburg S., Land J.A., Lyons J.M., Ito J.I., Pena A.S., Morre S.A. Do host genetic traits in the bacterial sensing system play a role in the development of Chlamydia trachomatis-associated tubal pathology in subfertile women? BMC Infect. Dis., 2006, vol. 6, no. 1, pp. 122. doi: 10.1186/1471-2334-6-122

36. Dusio G.F., Cardani D., Zanobbio L., Mantovani M., Luchini P., Battini L., Galli V., Diana A., Balsari A., Rumio C. Stimulation of TLRs by LMW-HA induces self-defense mechanisms in vaginal epithelium. Immunol. Cell. Biol., 2010, vol. 89, no. 5, pp. 630– 639. doi: 10.1038/icb.2010.140

37. Fahey J.V., Schaefer T.M., Wira C.R. Sex hormones modulation of human uterine epithelial cells immune response. Integr. Comp. Biol., 2006, vol. 46, no 6, pp. 1082–1087. doi: 10.1093/icb/icl036

38. Fichorova R.N., Tifonova R.T., Gilbert R.O., Costello C.E., Hayes G.R., Lucas J.J., Singh B.N. Trichomonas vaginalis lipophosphoglycan triggers a selective upregulation of cytokines by human female reproductive tract epithelial cells. Infect. Immun., 2006, vol. 74, no. 10, pp. 5773–5779. doi: 10.1128/iai.00631-06

39. Fisette P.L., Ram S., Andersen J.M., Guo W., Ingalls R.R. The Lip lipoprotein from Neisseria gonorrhoeae stimulates cytokine release and NF_kB activation in epithelial cells in a Toll_like receptor 2 dependent manner. J. Biol. Chem., 2003, vol. 278, no. 47, pp. 46252–46260. doi: 10.1074/jbc.m306587200

40. Gargo A., Tominac M., Krsulovic-Hresic V., Bace A., Matic M., Drazenovic V., Mlinaric-Galinovic G., Kosor E., Gotovac K., Bolanca I., BatinicaS., Rabatic S. Increased Toll-like receptors 4 expression in infants with respiratory syncytial virus bronchiolitis. J. Clin. Exp. Immunol., 2004, vol. 135, no. 2, pp. 267–272. doi: 10.1111/j.1365-2249.2004.02364.x

41. Gomez-Lopez N., Guilbert L.J., Olson D.M. Invasion of the leukocytes into the fetal-maternal interface during pregnancy. J. Leukoc. Biol., 2010, vol. 88, no. 4, pp. 625–633. doi: 10.1189/jlb.1209796

42. Gomez-Lopez N., Tanaka S., Zaeem Z., Metz G.A., Olson D.M. Maternal circulating leukocytes display early chemotactic responsiveness during late gestation. BMC Pregnancy Childbirth, 2013, vol. 13, no. 1, pp. S8. doi: 10.1186/1471-2393-13-S1-S8

43. Grigsby P.L., Novy M.J, Adams Waldorf K.M, Sadowsky D.W, Gravett M.G. Choriodecidual inflammation: a harbinger of the preterm labor syndrome. Reprod. Sci., 2010, vol. 17, no. 1, pp. 85–94. doi: 10.1177/1933719109348025

44. Hagberg H., Peebles D., Mallard C. Models of white matter injury: comparison of infectious, hypoxicischemic, and excitotoxic insults. Ment. Retard. Dev. Disabil. Res. Rev., 2002, vol. 8, no. 1, pp. 30–38. doi: 10.1002/mrdd.10007

45. Hart O.M., Athie-Morales V., O’Connor G.M., Gardiner C.M. TLR7/8 mediated activation of human NK-cells results in accessory cell-dependent IFN-gamma production. J. Immunol., 2005, vol. 175, no. 3, pp. 1636–1642. doi: 10.4049/jimmunol.175.3.1636

46. Helminen M., Nuolivirta K., Virta M., Halkosalo A., Korppi M., Vesikari T., Hurme M. IL-10 gene polymorphism at –1082 A/G is associated with severe rhinovirus bronchiolitis in infants. Pediatr. Pulmonol., 2008, vol. 43, no. 4, pp. 391–395. doi: 10.1002/ppul.20793

47. Hemmi H.A., Takeushi O., Kawai T., Kaisho T., Sato S., Sanjo H., Matsumoto M., Hoshino K., Wagner H., Takeda K., Akira S. Toll-like receptor recognizes bacterial DNA. Nature, 2000, vol. 408, no. 6813, pp. 740–745. doi: 10.1038/35047123

48. Hickey D.K., Fahey J.V., Wira C.R. Mouse estrous cycle regulation of vaginal versus uterine cytokines, chemokines, α-/β- defensins and TLRs. Innate Immunity, 2013, vol. 19, no. 2, pp. 121–131. doi: 10.1177/1753425912454026

49. Holmlund U., Wahamaa H., Bachmayer N., Bremme K., Sverremark-Ekstrom E., Palmblad K. The novel inflammatory cytokine high mobility group box protein 1 (HMGB1) is expressed by human term placenta. Immunology, 2007, vol. 122, no. 3, pp. 430–437. doi: 10.1111/j.1365-2567.2007.02662.x

50. Jarchum I., Liu M., Lipuma L., Pamer E.G. Toll-like receptor 5 stimulation protects mice from acute Clostridium difficile colitis. Infect. Immun. 2011, vol. 79, no. 4, pp. 1498–1503. doi: 10.1128/iai.01196-10

51. Janeway C., Travers P., Walport M., Shlomchik M. Immunobiology: the immune system in health and disease. 5th ed. New York: Garland Publishing, 2001. 884 р.

52. Kawai Т., Akira S. Toll-like receptors and their crosstalk’with other innate receptors in infection and immunity. Immunity, 2011, vol. 34, no. 5, pp. 637–650. doi: 10.1016/j.immuni.2011.05.006

53. Khan K.N., Kitajima N., Imamura T., Hiraki K., Fujishita A., Sekine I., Ishimaru T., Masuzaki H. Toll-like receptor 4-mediated growth of endometriosis by human heat-shock protein 70. Hum. Reprod., 2008, vol. 23, no. 10, pp. 2210–2219. doi: 10.1093/humrep/den195

54. Khan K.N., Kitajima M., Hiraki K., Fujishita A., Sekine I., Ishimaru T., Masuzaki H. Toll-like receptors receptors in innate immunity: role of bacterial edndotoxin and Toll-like receptor 4 in endometrium and endometriosis. Gynecol. Obstet. Invest., 2009, vol. 68, no. 1, pp. 40–52. doi: 10.1159/000212061

55. Kim W.Y., Lee J.W., Choi J.-J., Choi C.H., Kim T.-J., Kim B.-J., Song S.Y., Bae D.-S. Increased expression of Toll-like receptor 5 during progression of cervical neoplasia. Int. J. Gynecol. Cancer, 2008, vol. 18, no. 2, pp. 300–305. doi: 10.1111/j.1525-1438.2007.01008.x

56. Koga K., Aldo P.B., Mor G. Toll-like receptors and pregnancy: trophoblast as modulators of the immune response. J. Obstet. Gynaecol. Res., 2009, vol. 35, no. 2, pp. 191–202. doi: 10.1111/j.1447-0756.2008.00963.x

57. Koga K., Cardenas I., Aldo P., Abrahams V.M., Peng B., Fill S., Romero R., Mor G. Activation of TLR3 in the trophoblast is associated with preterm delivery. Am. J. Reprod. Immunol., 2009, vol. 61, no. 3, pp. 196–212. doi: 10.1111/j.1600-0897.2008.00682.x

58. Koga K., Izumi G., Mor G., Fujii T., Osuga Y. Toll-like receptors at the maternal-fetal Interface in normal pregnancy and pregnancy complications. Am. J. Reprod. Immunol., 2014, vol. 72, no. 2, pp. 192–205. doi: 10.1111/aji.12258

59. Koga K., Mor G. Toll-like R at the maternal-fetal interface in normal pregnancy and pregnancy disorders. Am. J. Reprod. Immunol., 2010, vol. 63, no. 6, pp. 587–600. doi: 10.1111/j.1600-0897.2010.00848.x

60. Kramer B.W., Ikegami M., Moss T.J., Nitsos I., Newnham J.P., Jobe A.H. Endotoxin-induced chorioamnionitis modulates innate immunity of monocytes in preterm sheep. Am. J. Respir. Crit. Care. Med., 2005, vol. 171, no. 1, pp. 73–77. doi: 10.1164/rccm.200406-745oc

61. Krikun G., Lockwood C.J., Abrahams V.M., Mor G., Paidas M., Guller S. Expression of Toll-like receptors in the human decidua. Histol. Histopathol., 2007, vol. 22, no. 8, pp. 847–854. doi: 10.14670/HH-22.847

62. Lekkerkerker A.N., van Kooyk Y., Geijtenbeek T.B. Viral piracy: HIV-1 targets dendriticcells for transmission. Curr. HIV Res., 2006, vol. 4, no. 2, pp. 169–176. doi: 10.2174/157016206776055020

63. MacDonald E.M., Savoy A., Gillgrass A., Fernandez S., Smieja M., Rosenthal K.L., Ashkar A.A., Kaushic C. Susceptibility of human female primary genital epithelial cells to herpes simplex virus, type-2 and the effect of TLR3 ligand and sex hormones on infection. Biol. Reprod., 2007, vol. 77, no. 6, pp. 1049–1059. doi: 10.1095/biolreprod.107.063933

64. Magnus M., Clark R., Myers L., Farley T., Kissinger P.J. Trichomonas vaginalis among HIV-infected women: are immune status or protease inhibitor use associated with subsequent T. vaginalis positivity? Sex. Transm. Dis., 2003, vol. 30, no. 11, pp. 839–843. doi: 10.1097/01.olq.0000086609.95617.8d

65. Mangoni M.L. Host-defense peptides: from biology to therapeutic strategies. Cell. Mol. Life Sci., 2011, vol. 68, no. 13, pp. 2157– 2159. doi: 10.1007/s00018-011-0709-3

66. Mitchell C., Gottsch M.L., Liu С., Fredricks D.N., Nelson D.B. Associations between vaginal bacteria and levels of vaginal defensins in pregnant women. Am. J. Obstet. Gynecol., 2013, vol. 208, no. 2, pp. 132.e1–132.e7. doi: 10.1016/j.ajog.2012.11.019

67. Monif G.R., Martens M.G. A guest editorial: antibiotic selection in obstetrics and gynecology. Obstet. Gynecol. Surv., 2002, vol. 57, no. 8, pp. 479–480. doi: 10.1097/01.OGX.0000024258.34252.68

68. Muthukuru M., Jotwani R., Cutler C.W. Oral mucosal endotoxin tolerance induction in chronic periodontitis. Infect. Immun., 2005, vol. 73, no. 2, pp. 687–694. doi: 10.1128/iai.73.2.687-694.2005

69. Nasu K., Itoh H., Yuge A., Nishida M., Narahara H. Human oviductal epithelial cells express Toll-like receptor 3 and respond to double-stranded RNA: Fallopian tube-specific mucosal immunity against viral infection. Hum. Reprod., 2006, vol. 22, no. 2, pp. 356–361. doi: 10.1093/humrep/del385

70. Netea M.G., Gow N.A., Munro CA, Bates S., Collins C., Ferwerda G., Hobson R.P., Bertram G., Hughes H.B., Jansen T., Jacobs L., Buurman E.T., Gijzen K., Williams D.L., Torensma R., McKinnon A., MacCallum D.M., Odds F.C., Van der Meer J.W., Brown A.J., Kullberg B.J. Immune sensing of Candida albicans requires cooperative recognition of mannans and glucans by lectin and Toll-like receptors. J. Clin. Invest., 2006, vol. 116, no. 6, pp. 1642–1650. doi: 10.1172/jci27114

71. Ochiel D.O., Fahey J.V., Ghosh M., Haddad S.N., Wira C. Innate immunity in the female reproductive tract: role of sex hormones in regulating uterine epithelial cell protection against pathogens. Curr. Womens Health. Rev., 2008, vol. 4, no. 2, pp. 102–117. doi: 10.2174/157340408784246395

72. Orihara K., Nagata K., Hamasaki S., Oba R., Hirai H., Ishida S., Kataoka T., Oketani N., Ogawa M., Mizoguchi E., Ichiki H., Tei C. Time-course of Toll-like receptor 2 expression, as a predictor of recurrence in patients with bacterial infectious diseases. Clin. Exp. Immunol., 2007, vol. 148, no. 2, pp. 260–270. doi: 10.1111/j.1365-2249.2007.03352.x

73. Patel M.V., Ghosh M., Fahey J.V., Wira C.R. Uterine epithelial cells specifically induce interferon-stimulated genes in response to polyinosinic-polycytidylic acid independently of estradiol. PLoS One, 2012, vol. 7, no. 4, pp. e35654. doi: 10.1371/journal.pone.0035654

74. Patni S., Wynen L.P., Seager A.L., Morgan G., White J.O., Thornton C.A. Expression and activity of Toll-like receptors 1-9 in the human term placenta and changes associated with labor at term. Biol. Reprod., 2009, vol. 80, no. 2, pp. 243–248. doi: 10.1095/biolreprod.108.069252

75. Patterson P.H. Neuroscience. Maternal effects on schizophrenia risk. Science, 2007, vol. 318, no. 5850, pp. 576–577. doi: 10.1126/science.1150196

76. Sampedro M., Aliaga M., Mazuelas T., Rodriquez-Grander J. Diagnosis of congenital infection. Enferm. Infect. Microbiol. Clin., 2011, vol. 29, no. 5, pp. 15–20. doi: 10.1016/S0213-005X(11)70039-8

77. Sanchez-Lopez J.A., Caballero I., Montazeri M., Maslehat N., Elliott S., Fernandez-Gonzalez R., Calle A., Gutierrez-Adan A., Fazeli A. Local activation of uterine Toll-like receptor 2 and 2/6 decreases embryo implantation and affects uterine receptivity in mice. Biol. Reprod., 2014, vol. 90, no. 4, p. 87. doi: 10.1095/biolreprod.113.115253

78. Saphronova V.G., Sukhikh T., Van’ko L.V. Modern concept on the role of phagocytes in the pathogenesis of complications during pregnancy. Bull. Experim. Biol. Med., 2002, vol. 134, no. 2, pp. 107–116. doi: 10.1023/A:1021117826014

79. Shi L., Fatemi S.H., Sidwell R.W., Patterson P.H. Maternal influenza infection causes marked behavioral and pharmacological changes in the offspring. J. Neurosci., 2003, vol. 23, no. 1, pp. 297–302.

80. Sonoda Y., Abdel Mageed A.M., Isobe N., Yoshimura Y. Induction of avian β-defensins by CpG oligodeoxynucleotides and proinflammatory cytokines in hen vaginal cells in vitro. Reproduction, 2013, vol. 145, no. 6, pp. 621–631. doi: 10.1530/rep-12-0518

81. Suzuki Y., Yamamoto T., Kojima K., Tanemura M., Tateyama H., Suzumori K. Evaluation levels of cytokines in amniotic fluid of women with intrauterine infection in the early second trimester. Fetal. Diagn. Ther., 2005, vol. 21, no. 1, pp. 45–50. doi: 10.1159/000089047

82. Taylor B.D., Darville T., Ferrell R.E., Kammerer C.M., Roberta B., Ness R.B., Haggerty C.L. Variants in Toll-like receptor 1 and 4 genes are associated with Chlamydia trachomatis among women with pelvic inflammatory disease. J. Infect. Dis., 2012, vol. 205, no. 4, pp. 603–609. doi: 10.1093/infdis/jir822

83. Tse D.B., Young B.K. Coordinate expression of Th1/Th2 phenotypes in maternal and fetal blood: evidence for a transplacental nexus. J. Perinat. Med., 2012, vol. 40, no. 2, pp. 165–170. doi: 10.1515/jpm.2011.131

84. Vega-Sanchez R., Gomez-Lopez N., Flores-Pliego A., Clemente-Galvan S., Estrada-Gutierrez G., Zentella-Dehesa A., Maida-Claros R., Beltran-Montoya J., Vadillo-Ortega F. Placental blood leukocytes are functional and phenotypically different than peripheral leukocytes during human labor. J. Reprod. Immunol., 2010, vol. 84, no. 1, pp. 100–110. doi: 10.1016/j.jri.2009.08.002

85. Viemann D., Dubbel G., Schleifenbaum S., Harms E., Sorg C., Roth J. Expression of Toll-like receptors in neonatal sepsis. J. Pediatr. Res., 2005, vol. 58, no. 4, pp. 654–659. doi: 10.1203/01.pdr.0000180544.02537.fd

86. Von Bernuth H., Picard C., Puel A., Casanova J.-L. Experimental and natural infections in MyD88- and IRAK-4-deficient mice and humans. Eur. J. Immunol., 2012, vol. 42, no. 12, pp. 3126–3135. doi: 10.1002/eji.201242683

87. Wang H., Ogawa M., Wood J.R., Bartolomei M.S., Sammel M.D., Kusanovic J.P., Walsh S.W., Romero R., Strauss J.F. Genetic and epigenetic mechanisms combine to control MMP1 expression and its association with preterm premature rupture of membranes. Hum. Mol. Genet., 2008, vol. 17, no. 8, pp. 1087–1096. doi: 10.1093/hmg/ddm381

88. Weiss K., Christiaansen A.F., Fulton R.B., Meyerholz D.K., Varga S.M. Multiple CD4+ T cell subsets produce immunomodulatory IL-10 during respiratory syncytial virus infection. J. Immunol., 2011, vol. 187, no. 6, pp. 3145–3154. doi: 10.4049/jimmunol.1100764

89. Wiechuła B., Cholewa K., Ekiel A., Romanik M., Dolezych H., Martirosian G. HBD-1 and hBD-2 are expressed in cervicovaginal lavage in female genital tract due to microbial infections. Ginekol. Pol., 2010, vol. 81, no. 4, pp. 268–271.

90. Xu J., Yang Y., Sun J., Ding Y., Su L., Shao C., Jiang B. Expression of TLR and their association with cytokine responses in peripheral blood mononuclear cells of children with acute rotavirus diarrhea. J. Clin. Exp. Immunol., 2006, vol. 144, no. 3, pp. 376–381. doi: 10.1111/j.1365-2249.2006.03079.x

91. Zhang C. The role of inflammatory cytokines in endothelial dysfunction. Basic. Res. Cardiol., 2008, vol. 103, no. 5, pp. 398–406. doi: 10.1007/s00395-008-0733-0

92. Zhang D.M., Li Y.W., Mao B.L., Qian G.S. Down-regulation of Toll-like receptor 4 is related to the tolerance to lipopolysaccharide in rat alveolar macrophages. Zhonghua Jie He He Hu Xi Za Zhi., 2003, vol. 26, no. 7. pp. 411–414.

93. Zhang J.P., Chen C., Yang Y. Changes and clinical significance of Toll-like receptor 2 and 4 expression in neonatal infections. Zhonghua Er Ke Za Zhi., 2007, vol. 45, no. 2, pp. 130–133.


Для цитирования:


Караулов А.В., Афанасьев С.С., Алешкин В.А., Бондаренко Н.Л., Воропаева Е.А., Афанасьев М.С., Несвижский Ю.В., Борисова О.Ю., Алешкин А.В., Урбан Ю.Н., Борисова А.Б., Воропаев А.Д. РОЛЬ РЕЦЕПТОРОВ ВРОЖДЕННОГО ИММУНИТЕТА (TLRs) В ПОДДЕРЖАНИИ ГОМЕОСТАЗА ГЕНИТАЛЬНОГО ТРАКТА ЖЕНЩИН, В РАЗВИТИИ БЕРЕМЕННОСТИ И ПРИ ВНУТРИУТРОБНОЙ ИНФЕКЦИИ. Инфекция и иммунитет. 2018;8(3):251-262. https://doi.org/10.15789/2220-7619-2018-3-251-262

For citation:


Karaulov A.V., Afanasiev S.S., Aleshkin V.A., Bondarenko N.L., Voropaeva E.A., Afanasiev M.S., Nesvizhsky Y.V., Borisova O.Y., Aleshkin A.V., Urban Y.N., Borisova A.B., Voropaev A.D. THE ROLE OF INNATE IMMUNITY RECEPTORS (TLRs) IN MAINTAINING THE HOMEOSTASIS OF THE FEMALE GENITAL TRACT IN DEVELOPING PREGNANCY AND INTRAUTERINE INFECTION. Russian Journal of Infection and Immunity. 2018;8(3):251-262. (In Russ.) https://doi.org/10.15789/2220-7619-2018-3-251-262

Просмотров: 253


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2220-7619 (Print)
ISSN 2313-7398 (Online)