Preview

Инфекция и иммунитет

Расширенный поиск

ВЫЯВЛЕНИЕ МАРКЕРОВ ИНФЕКЦИИ, ОБУСЛОВЛЕННОЙ C. TRACHOMATIS И C. PNEUMONIAE, У БОЛЬНЫХ С ЗАБОЛЕВАНИЯМИ ЖЕЛУДОЧНО-КИШЕЧНОГО ТРАКТА

https://doi.org/10.15789/2220-7619-2018-3-316-324

Полный текст:

Аннотация

К настоящему времени данными клинических наблюдений убедительно показано, что возбудители хламидийных инфекций, C. trachomatis и C. pneumoniae, способны вызывать серьезные заболевания с тяжелыми осложнениями и последствиями. Имеются предположения, что развившаяся хроническая хламидийная инфекция может стать важным фактором в патогенезе заболеваний желудочно-кишечного тракта (ЖКТ), которые проявляются в так называемый постинфекционный период. Как известно, хламидийная инфекция обладает тропизмом к цилиндрическому эпителию, который у человека выстилает слизистую оболочку уретры, цервикального канала, прямой кишки, конъюнктивы глаз и области глотки. Однако роль возбудителей хламидийных инфекций, таких как C. trachomatis и C. pneumoniae, в возникновении заболеваний ЖКТ человека не изучена. С целью изучения возможной взаимосвязи между заболеваниями ЖКТ и наличием маркеров хламидийной инфекции была отобрана группа больных с заболеваниями органов ЖКТ, у которых проводили выявление антител к C. trachomatis и C. pneumoniae и ДНК этих возбудителей в сыворотке крови, биоптатах печени и желчевыводящих протоков. В результате ДНК C. trachomatis в сыворотке крови была выявлена в 50% случаев, а в биоптатах печени в 59,3%. Разработан новый подход в серологической диагностике хламидийной инфекции, вызванной C. trachomatis, который позволил выявить диагностические титры антител в этой группе больных в 51,9% случаев , в группе сравнения в 11,6% случаев. Среди 50% больных, у которых ДНК была выявлена в сыворотке крови, в 64,3% случаев она также выявлялась в биоптатах органов ЖКТ. При обнаружении ДНК C. trachomatis в сыворотке крови антитела к «культуральному» антигену обнаруживались в 60,1% случаев, а при одновременном обнаружении ДНК C. trachomatis в сыворотке крови и органах ЖКТ они обнаруживались в 72,2% случаев. Одновременное выявление C. trachomatis как в сыворотке крови, так и в органах ЖКТ может свидетельствовать о способности C. trachomatis распространяться гематогенным путем и инфицировать органы, удаленные от первичного очага инфекции. Полученные данные, безусловно, требуют даль нейшего изучения в свете выявления связи между обнаружением возбудителя и развитием патологии органов ЖКТ, однако в целом результаты являются еще не изученным свидетельством возможности инфицирования C. trachomatis органов ЖКТ.

Об авторах

Н. E. Бондарева
ФГБУ ФНИЦЭМ им. Н.Ф. Гамалеи МЗ РФ.
Россия

научный сотрудник лаборатории хламидиоза отдела медицинской микробиологии.

123098, Россия, Москва, ул. Гамалеи, 18.

Тел.: 8 962 985-07-55 (моб.).



E. Ю. Моргунова
ФГБУ ФНИЦЭМ им. Н.Ф. Гамалеи МЗ РФ.
Россия

научный сотрудник лаборатории хламидиозов отдела медицинской микробиологии.

Москва.


H. А. Зигангирова
ФГБУ ФНИЦЭМ им. Н.Ф. Гамалеи МЗ РФ.
Россия

д.б.н., профессор, руководитель отдела медицинской микробиологии.

Москва.


Ю. Г. Шапкин
ФГБОУ ВО Саратовский ГМУ им. В.И. Разумовского МЗ РФ.
Россия

д.м.н., профессор, заслуженный врач РФ, зав. кафедрой общей хирургии.

Саратов.


Ю. В. Чалык
ФГБОУ ВО Саратовский ГМУ им. В.И. Разумовского МЗ РФ.
Россия

д.м.н., профессор, профессор кафедры общей хирургии.

Саратов.


Р. Ю. Чалык
МУЗ Городская клиническая больница № 6 им. академика В.Н. Кошелева.
Россия

к.м.н., врач ГУЗ Городская клиническая больница № 6 им. академика В.Н. Кошелева.

Саратов.


Список литературы

1. Абакарова П.Р. Урогенитальный хламидиоз: принципы диагностики и лечения // Гинекология. 2006. Т. 8, № 2. С. 21–23.

2. Мавров Г.И. Хламидийные инфекции: биология возбудителей, патогенез, клиника, диагностика, лечение, профилактика. Киев, 2005. 524 с.

3. Султанахмедов Э.С., Утц С.Р., Салтыков Ю.В., Мотин В.Л., Федорова В.А. Детекция Chlamydia trachomatis в образцах крови как метод диагностики осложненных и персистирующих форм урогенитальной хламидийной инфекции // Саратовский научно-медицинский журнал. 2015. Т. 11, № 3. С. 381–385.

4. Al-Aydie S.N., Obeidat N.M., Al-Younes H.M. Role of Chlamydia pneumoniae in community-acquired pneumonia in hospitalized Jordanian adults // J. Infect. Dev. Ctries, 2016, vol. 10, no. 3, pp. 227–236. doi: 10.3855/jidc.6590

5. Bartlett J.G., Breiman R.F., Mandell L.A., Fine T.M. Jr. Community-acquired pneumonia in adults: guidelines for management. Clin. Infect. Dis., 1998, vol. 26, no. 4, pp. 811–838. doi: 10.1086/513953

6. Beatty W.L., Morrison R.P., Byrne G.I. Persistent chlamydiae: from cell culture to a paradigm for chlamydial pathogenesis. Microbiol. Rev., 1994, vol. 58, no. 4, pp. 686–699.

7. Blasi F., Damato S., Cosentini R., Tarsia P., Raccanelli R., Centanni S., Allegra L.; Chlamydia InterAction with COPD (CIAC) Study Group. Chlamydia pneumoniae and chronic bronchitis: association with severity and bacterial clearance following treatment. Thorax, 2002, vol. 57, no. 8, pp. 672–676. doi: 10.1136/thorax.57.8.672

8. Caldwell H.D., Wood H., Crane D., Bailey R., Jones R.B., Mabey D., Maclean I., Mohammed Z., Peeling R., Roshick C., Schachter J., Solomon A.W., Stamm W.E., Suchland R.J., Taylor L., West S.K., Quinn T.C., Belland R.J., McClarty G. Polymorphisms in Chlamydia trachomatis tryptophan synthase genes differentiate between genital and ocular isolates. J. Clin. Invest., 2003, vol. 111, no. 11, pp. 1757–1769. doi: 10.1172/JCI17993

9. Carter J.D., Inman R.D. Chlamydia-induced reactive arthritis: hidden in plain sight? Best Pract. Res. Clin. Rheumatol., 2011, vol. 25, no. 3, pp. 359–374. doi: 10.1016/j.berh.2011.05.001

10. Choroszy-Król I., Frej-Mądrzak M., Hober M., Sarowska J., Jama-Kmiecik A. Infections caused by Chlamydophila pneumoniae. Adv. Clin. Exp. Med., 2014, vol. 23, no. 1, pp. 123–126

11. Dlugosz A., Törnblom H., Mohammadian G., Morgan G., Veress B., Edvinsson B., Sandström G., Lindberg G. Chlamydia trachomatis antigens in enteroendocrine cells and macrophages of the small bowel in patients with severe irritable bowel syndrome. BMC Gastroenterol., 2010, vol. 10: 19. doi: 10.1186/1471-230X-10-19

12. Francis C., Prior A., Whorwell P.J., Morris J. Chlamydia trachomatis infection: is it relevant in irritable bowel syndrome? Digestion, 1998, vol. 59, no. 2, pp. 157–159. doi: 10.1159/000007481

13. Haggerty C.L., Gottlieb S.L., Taylor B.D., Low N., Xu F., Ness R.B. Risk of sequelae after Chlamydia trachomatis genital infection in women. J. Infect. Dis., 2010, vol. 201, no. 2, pp. 134–155. doi: 10.1086/652395

14. Jakus S., Neuer A., Dieterle S., Bongiovanni A.M., Witkin S.S. Antibody to the Chlamydia trachomatis 60 kDa heat shock protein in follicular fluid and in vitro fertilization outcome. Am. J. Reprod. Immunol., 2008, vol. 59, no. 2, pp. 85–89. doi: 10.1111/j.1600- 0897.2007.00539.x

15. Linhares I.M., Witki S.S. Immunopathogenic consequences of Chlamydia trachomatis 60 kDa heat shock protein expression in the female reproductive tract. Cell. Stress Chaperones, 2010, vol. 15, no. 5, pp. 467–473. doi: 10.1007/s12192-010-0171-4

16. Mascellino M.T., Ciardi M.R., Oliva A., Cecinato F., Hassemer M.P., Borgese L. Chlamydia trachomatis detection in a population of asymptomatic and symptomatic women: correlation with the presence of serological markers for this infection. New Microbiol., 2008, no. 31, pp. 249–256.

17. Miyashita N., Fukano H., Yoshida K., Niki Y., Matsushima T. Chlamydia pneumoniae infection in adult patients with persistent cough. J. Med. Microbiol., 2003, no. 52, pp. 265–269.

18. Neuer A., Lam K.N., Tiller F.W., Kiesel L., Witkin S.S. Humoral immune response to membrane components of Chlamydia trachomatis and expression of the human 60 kDa heat shock protein in follicular fluid of in-vitru fertilization patients. Hum. Reprod., 1997, vol. 12, no. 5, pp. 925–929.

19. Ondondo B.O., Brunham R.C., Harrison W.G., Kinyari T., Sheth P.M., Mugo N.R., Cohen C.R. Frequency and magnitude of Chlamydia trachomatis elementary body- and heat shock protein 60-stimulated interferon γ responses in peripheral blood mononuclear cells and endometrial biopsy samples from women with high exposure to infection. J. Infect. Dis., 2009, vol. 199, no. 12, pp. 1771–1779. doi: 10.1086/599095

20. Peeling R.W., Bailey R.L., Conway D.J., Holland M.J., Campbell A.E., Jallow O., Whittle H.C., Mabey C.W. Antibody response to the 60-kDa chlamydial heat-shock protein is associated with scarring trachoma. J. Infect. Dis., 1998, vol. 177, no. 1, pp. 256–259. doi: 10.1086/517367

21. Peipert J.F. Clinical practice. Genital chlamydial infections. N. Engl. J. Med., 2003, vol. 349, no. 25, pp. 2424–2430. doi: 10.1056/ NEJMcp030542

22. Persson К., Boman J. Comparison of five serologic tests for diagnosis of acute infections by Chlamydia pneumoniae. Clin. Diagn. Lab. Immunol., 2000, vol. 7, no. 5, pp. 739–740.

23. Rank R.G., Yeruva L. Hidden in plain sight: chlamydial gastrointestinal infection and its relevance to persistence in human genital infection. Infect. Immun., 2014, vol. 82, no. 4, pp. 1362–1371. doi: 10.1128/IAI.01244-13

24. Schachter J., Moncada J., Liska S., Shayevich C., Klausner J.D. Nucleic acid amplification tests in the diagnosis of chlamydial and gonococcal infections of the oropharynx and rectum in men who have sex with men. Sex. Transm. Dis., 2008, vol. 35, no. 7, pp. 637–642. doi: 10.1097/OLQ.0b013e31817bdd7e

25. Seraceni S., De Seta F., Colli C., Del Savio R., Pesel G., Zanin V., D’Agaro P., Contini C., Comar M. High prevalence of HPV multiple genotypes in women with persistent chlamydia trachomatis infection. Infect. Agent. Cancer, 2014, vol. 9: 30. doi: 10.1186/1750- 9378-9-30

26. Skilton R.J., Cutcliffen L.T., Barlow D., Wang Y., Salim O., Lambden P.R., Clarke I.N. Penicillin induced persistence in Chlamydia trachomatis: high quality time lapse video analysis of the developmental cycle. PLoS ONE, 2009, vol. 4, no. 11: e7723. doi: 10.1371/ journal.pone.0007723

27. Smith-Norowitz T.A., Chotikanatis K., Erstein D.P., Perlman J., Norowitz Y.M., Joks R., Durkin H.G., Hammerschlag M.R., Kohlhoff S. Chlamydia pneumoniae enhances the Th2 profile of stimulated peripheral blood mononuclear cells from asthmatic patients. Hum. Immunol., 2016, vol. 77, no. 5, pp. 382–388. doi: 10.1016/j.humimm.2016.02.010

28. Tiitinen A., Surcel H.M., Halttunen M., Birkelund S., Bloigu A., Christiansen G., Koskela P., Morrison S.G., Morrison R.P., Paavonen J. Chlamydia trachomatis and chlamydial heat shock protein 60-specific antibody and cell-mediated responses predict tubal factor infertility. Hum. Reprod., 2006, vol. 21, no. 6, pp. 1533–1538. doi: 10.1093/humrep/del014

29. Zigangirova N.A., Rumyantseva Y.P., Morgunova E.Y., Kapotina L.N., Didenko L.V., Kost E.A., Koroleva E.A., Bashmakov Y.K., Petyaev I.M. Detection of C. trachomatis in the serum of the patients with urogenital chlamydiosis. Biomed. Res. Int., 2013, 7 p. doi: 10.1155/2013/489489


Для цитирования:


Бондарева Н.E., Моргунова E.Ю., Зигангирова H.А., Шапкин Ю.Г., Чалык Ю.В., Чалык Р.Ю. ВЫЯВЛЕНИЕ МАРКЕРОВ ИНФЕКЦИИ, ОБУСЛОВЛЕННОЙ C. TRACHOMATIS И C. PNEUMONIAE, У БОЛЬНЫХ С ЗАБОЛЕВАНИЯМИ ЖЕЛУДОЧНО-КИШЕЧНОГО ТРАКТА. Инфекция и иммунитет. 2018;8(3):316-324. https://doi.org/10.15789/2220-7619-2018-3-316-324

For citation:


Bondareva N.E., Morgunova E.Y., Zigangirova N.A., Shapkin Y.G., Chalyk Y.V., Chalyk R.Y. IDENTIFICATION MARKERS OF INFECTION DUE TO C. TRACHOMATIS AND C. PNEUMONIAE, IN PATIENTS WITH DISEASES OF THE GASTROINTESTINAL TRACT. Russian Journal of Infection and Immunity. 2018;8(3):316-324. (In Russ.) https://doi.org/10.15789/2220-7619-2018-3-316-324

Просмотров: 92


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2220-7619 (Print)
ISSN 2313-7398 (Online)