Preview

Инфекция и иммунитет

Расширенный поиск

Анализ экспрессии мРНК основных участников сигналинга апоптоза и выживания в лейкоцитах крови детей с острым ВЭБ-инфекционным мононуклеозом

https://doi.org/10.15789/2220-7619-2019-5-6-723-734

Полный текст:

Аннотация

Острый ВЭБ-ассоциированный мононуклеоз развивается преимущественно у детей и у пациентов с функциональными нарушениями иммунитета. Последствием перенесенной инфекции могут быть развитие вторичной иммунной недостаточности, новообразований, различные нарушения клеточных иммунных реакций. Несмотря на активное изучение молекулярных механизмов ВЭБ-инфекции, необходим поиск новых молекулярно-генетических факторов патогенеза ВЭБ-опосредованного мононуклеоза и ВЭБ-ассоциированной злокачественной трансформации клеток, которые могут быть использованы в клинической практике для мониторинга течения инфекции и в качестве предиктивных показателей риска развития ВЭБ-ассоциированных осложнений в виде иммунодефицита и новообразований. В настоящей работе был проведен комплексный полу количественный анализ экспрессии мРНК основных участников сигналинга апоптоза и выживания в лейкоцитах крови детей с острым ВЭБ-инфекционным мононуклеозом и в период реконвалесценции с помощью разработанных нами сплайсинг-ориентированных ДНК-микрочипов. Такие микрочипы позволяли оценивать как суммарную экспрессию генов (маркированных знаком — Σ), так и отдельных транскриптов, образую щихся в результате альтернативного сплайсинга. Показано, что баланс уровней мРНК в острой фазе ВЭБ-инфекционного мононуклеоза смещался в сторону повышения экспрессии антиапоптотических факторов и элементов NF-κB-зависимого сигналинга выживания, что может существенно усиливать резистентность клеток к апоптозу. Литературными данными подтверждались ВЭБ-ассоциированные изменения некоторых факторов (BIM/BCL2L11-Σ, PUMA/BBC3-NM_001127241, BID-Σ, CASP3-Σ, NFKB1-Σ, RELA-Σ). Также нами были обнаружены изменения уровней кодирующих и некодирующих транскриптов, ВЭБ-ассоциированный характер которых не описан в литературе (DCR1/TNFRSF10C-NM_003841, DR5/TNFRSF10B-NR_027140, CASP6 beta/CASP6-NM_032992, CASP7-NM_033338). Функциональные свойства данных молекул позволяют предположить их важную роль в патогенезе ВЭБ-ассоциированного мононуклеоза. В фазе реконвалесценции на фоне отсутствия клинических признаков заболевания уровни экспрессии некоторых мРНК оставались измененными по сравнению со здоровыми донорами (например, DCR2/TNFRSF10D-NM_003840, CASP8-Σ, CASP3-Σ, BIM/BCL2L11-Σ, BCL2-NM_000633, MCL1-Σ, BCL-W/BCL2L2-Σ, BCL-XL/BCL2L1-NM_138578, BIRC2-NM_001166, XIAP-NM_001167, TRAF2-NM_021138, MAP3K14-Σ, NFKB1-Σ), что может указывать на наличие отдаленных молекулярных последствий ВЭБ-ассоциированного мононуклеоза. Данные изменения могут обусловливаться, с одной стороны, пролонгированным иммунным ответом на инфекцию, а с другой стороны, происходить под влиянием ВЭБ-ассоциированных факторов, облегчающих персистенцию вируса в организме. В целом выявленные нами молекулярные особенности течения заболевания указывают на формирование предпосылок для хронизации инфекционного процесса. Полученные данные расширяют существующие представления о молекулярных механизмах патогенеза ВЭБ-инфекционного мононуклеоза.

Об авторах

Н. А. Сахарнов
http://www.nniiem.ru
ФБУН Нижегородский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной Роспотребнадзора
Россия

Сахарнов Николай Александрович, научный сотрудник лаборатории молекулярной биологии и биотехнологии

603950, Нижний Новгород, ул. Малая Ямская, 71.

Тел.: 8 (831) 469-79-46 (служебн.); 8 950 624-87-12 (моб.). Факс: 8 (831) 469-79-20.



О. В. Уткин
ФБУН Нижегородский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной Роспотребнадзора
Россия

к.б.н., зав. лабораторией молекулярной биологии и биотехнологии

Нижний Новгород


Е. Н. Филатова
ФБУН Нижегородский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной Роспотребнадзора
Россия

к.б.н., ведущий научный сотрудник лаборатории молекулярной биологии и биотехнологии

Нижний Новгород


Д. И. Князев
ФБУН Нижегородский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной Роспотребнадзора
Россия

к.б.н., старший научный сотрудник лаборатории молекулярной биологии и биотехнологии

Нижний Новгород


Н. Б. Преснякова
ФБУН Нижегородский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной Роспотребнадзора
Россия

научный сотрудник лаборатории молекулярной биологии и биотехнологии

Нижний Новгород



Список литературы

1. Кудин А.П., Романовская Т.Р., Белевцев М.В. Состояние специфического иммунитета при инфекционном мононуклеозе у детей // Медицинский журнал. 2007. Т. 1, № 19. С. 102–106.

2. Кускова Т.К., Белова Е.Г. Семейство герпесвирусов на современном этапе // Лечащий врач. 2004. Т. 5. С. 64–69.

3. Уткин О.В., Новиков В.В. Регуляция апоптоза с помощью альтернативного сплайсинга матричной РНК // Российский биотерапевтический журнал. 2007. Т. 6, № 2. C. 13–20.

4. Уткин О.В., Новиков В.В. Рецепторы смерти в модуляции апоптоза // Успехи современной биологии. 2012. Т. 132, № 4. С. 381–390.

5. Филатова Е.Н., Уткин О.В. Роль некодирующих изоформ мРНК белок-кодирующих генов в регуляции генной экспрессии // Генетика. 2018. Т. 54, № 8. С. 879–887. doi: 10.1134/S0016675818080052

6. Филатова Е.Н., Уткин О.В. Современные подходы к моделированию герпесвирусной инфекции // Журнал МедиАль. 2014. Т. 2, № 12. С. 172–197.

7. Anderton E., Yee J., Smith P., Crook T., White R.E., Allday M.J. Two Epstein–Barr virus (EBV) oncoproteins cooperate to repress expression of the proapoptotic tumor-suppressor Bim: clues to the pathogenesis of Burkitt’s lymphoma. Oncogene, 2008, vol. 27, no. 4, pp. 421–433. doi: 10.1038/sj.onc.1210668

8. Barblu L., Smith N., Durand S., Scott-Algara D., Boufassa F., Delfraissy J.F., Cimarelli A., Lamwbotte O., Herbeuval J.P. Reduction of death receptor 5 expression and apoptosis of CD4+ T cells from HIV controllers. Clin. Immunol., 2014, vol. 155, no. 1, pp. 17–26. doi: 10.1016/j.clim.2014.07.010

9. Carmilleri-Broet B.S., Davi F., Feuillard J., Bourgeois C., Seilhean D., Hauw J.J., Rapha l M. High expression of latent membrane protein 1 of Epstein–Barr virus and BCL-2 oncoprotein in acquired immunodeficiency syndrome-related primary brain lymphomas. Blood, 1995, vol. 86, no. 2, pp. 432–435

10. Chang M.S., Kim D.H., Roh J.K., Middeldorp J.M., Kim Y.S., Kim S., Han S., Kim C.W., Lee B.L., Kim W.H., Woo J.H. Epstein–Barr virus-encoded BARF1 promotes proliferation of gastric carcinoma cells through regulation of NF-κB. J. Virol., 2013, vol. 87, no. 19, pp. 10515–10523. doi: 10.1128/JVI.00955-13

11. Chanut A., Duguet F., Marfak A., David A., Petit B., Parrens M., Durand-Panteix S., Boulin-Deveza M., Gachard N., YoulyouzMarfak I., Bordessoule D., Feuillard J., Faumont N. RelA and RelB cross-talk and function in Epstein–Barr virus transformed B cells. Leukemia, 2014, vol. 28, no. 4, pp. 871–879. doi: 10.1038/leu.2013.274

12. Choy E.Y., Siu K.L., Kok K.H., Lung R.W., Tsang C.M., To K.F., Kwong D.L., Tsao S.W., Jin D.Y. An Epstein–Barr virus-encoded microRNA targets PUMA to promote host cell survival. J. Exp. Med., 2008, vol. 205, no. 11, pp. 2551–2560. doi: 10.1084/jem.20072581

13. Cohen J.I., Fauci A.S., Varmus H., Nabel G.J., Epstein–Barr virus: an important vaccine target for cancer prevention. Sci. Transl. Med., 2011, vol. 3: 107fs7. doi: 10.1126/scitranslmed.3002878

14. Collison A., Foster P.S., Mattes J. Emerging role of tumour necrosis factor-related apoptosis-inducing ligand (TRAIL) as a key regulator of inflammatory responses. Clin. Exp. Pharmacol. Physiol., 2009, vol. 36, no. 11, pp. 1049–1053. doi: 10.1111/j.1440-1681.2009.05258.x

15. Devergne O., Hatzivassiliou E., Izumi K.M., Kaye K.M., Kleijnen M.F., Kieff E., Mosialos G. TRAF1, TRAF2 and TRAF3 effect NF-kB activation by an Epstein–Barr Virus LMP1 domain important for B lymphocyte transformation. Mol. Cell Biol., 1996, vol. 16, pp. 7098–7107. doi: 10.1128/MCB.16.12.7098

16. Devergne O., McFarland E.C., Mosialos G., Izumi K.M., Ware C.F., Kieff E. Role of the TRAF binding site and NF-kB activation in Epstein–Barr virus latent membrane protein 1-induced cell gene expression. J. Virol., 1998, vol. 72, pp. 7900–7908.

17. Dojcinov S.D., Fend F., Quintanilla-Martinez L. EBV-positive lymphoproliferations of B-, Tand NK-cell derivation in nonimmunocompromised hosts. Pathogens, 2018, vol. 7, p. 28. doi: 10.3390/pathogens7010028

18. Du J., Liang X., Liu Y., Qu Z., Gao L., Han L., Liu S., Cui M., Shi Y., Zhang Z., Yu L., Cao L., Ma C., Zhang L., Chen Y., Sun W. Hepatitis B virus core protein inhibits TRAIL-induced apoptosis of hepatocytes by blocking DR5 expression. Cell Death Differ., 2009, vol. 16, no. 2, pp. 219–229. doi: 10.1038/cdd.2008.144

19. Eliopoulos A.G., Stack M., Dawson C.W., Kaye K.M., Hodgkin L., Sinota S., Rowe M., Young L.S. Epstein–Barr virus-encoded LMP1 and CD40 mediate IL-6 production in epithelial cells via an NF-kB pathway involving TNF receptor associated factors. Oncogene, 1997, vol. 14, no. 24, pp. 2899–2916. doi: 10.1038/sj.onc.1201258

20. Eliopoulos A.G., Young L.S. LMP1 structure and signal transduction. Semin. Cancer Biol., 2001, vol. 11, pp. 435–444. doi: 10.1006/scbi.2001.0410

21. Floettmann J.E., Rowe M. Epstein–Barr virus latent membrane protein-1 (LMP1) C-terminus activation region 2 (CTAR2) maps to the far C-terminus and requires oligomerisation for NF-κB activation. Oncogene, 1997, vol. 15, pp. 1851–1858. doi: 10.1038/sj.onc.1201359

22. Fu Q., He C., Mao Z.R. Epstein–Barr virus interactions with the Bcl-2 protein family and apoptosis in human tumor cells. Journal of Zhejiang University. Science B. Biomedicine and Biotechnology, 2013, vol. 14, no. 1, pp. 8–24. doi: 10.1631/jzus.B1200189

23. Gires O., Zimber-Strobl U., Gonnella R., Ueffing M., Marschall G., Zeidler R., Pich D., Hammerschmidt W. Latent membrane protein 1 of Epstein–Barr virus mimics a constitutively active receptor molecule. EMBO J., 1997, vol. 16, pp. 6131–6140. doi: 10.1093/emboj/16.20.6131

24. Harold C., Cox D., Riley K.J. Epstein–Barr viral microRNAs target caspase 3. Virol. J., 2016, vol. 13: v145. doi: 10.1186/s12985-016-0602-7

25. Hayward S.D. Viral interactions with the Notch pathway. Semin. Cancer Biol., 2004, vol. 14, no. 5, pp. 387–396. doi: 10.1016/j.semcancer.2004.04.018

26. Hjalgrim H., Askling J., Sørensen P., Madsen M., Rosdahl N., Storm H.H., Hamilton-Dutoit S., Eriksen L.S., Frisch M., Ekbom A., Melbye M. Risk of Hodgkin’s disease and other cancers after infectious mononucleosis. J. Natl. Cancer Inst., 2000, vol. 92, no. 18, pp. 1522–1528

27. Irmler M., Thome M., Hahne M., Schneider P., Hofmann K., Steiner V., Bodmer J.L., Schroter M., Burns K., Mattmann C., Rimoldi D., French L.E., Tschopp J. Inhibition of death receptor signals by cellular FLIP. Nature, 1997, vol. 388, no. 6638, pp. 190–195. doi: 10.1038/40657

28. Iyori M., Zhang T., Pantel H., Gagne B.A., Sentman C.L. TRAIL/DR5 plays a critical role in NK cell-mediated negative regulation of dendritic cell cross-priming of T cells. J. Immunol., 2011, vol. 187, no. 6, pp. 3087–3095. doi: 10.4049/jimmunol.1003879

29. Kaye K.M., Devergne O., Harada J.N., Izumi K.M., Yalamanchili R., Kieff E., Mosialos G. Tumour necrosis factor receptor associated factor 2 is a mediator of NF-kB activation by latent infection membrane protein 1, the Epstein–Barr virus transforming protein. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1996, vol. 93, pp. 11085–11090

30. Knyazev D.I., Starikova V.D., Utkin О.V., Solntsev L.A., Sakharnov N.A., Efimov E.I. Splicing-sensitive DNA-microarrays: peculiarities and application in biomedical research. CTM, 2015, vol. 7, no. 4. pp. 162–172. doi: 10.17691/stm2015.7.4.23

31. Kohlhof H., Hampel F., Hoffmann R., Burtscher H., Weidle U.H., Holzel M., Eick D., Zimber-Strobl U., Strobl L. J. Notch1, Notch 2 and Epstein–Barr virus-encoded nuclear antigen 2 signaling differentially affects proliferation and survival of Epstein– Barr virus-infected B cells. Blood, 2009, vol. 113, no. 22, pp. 5506–5515. doi: 10.1182/blood-2008-11-190090

32. Lantner F., Starlets D., Gore Y., Flaishon L., Yamit-Hezi A., Dikstein R., Leng L., Bucala R., Machluf Y., Oren M., Shachar I. CD74 induces TAp63 expression leading to B-cell survival. Blood, 2007, vol. 110, no. 13, pp. 4303–4311. doi: 10.1182/blood-2007-04-087486

33. Lee A.W., Champagne N., Wang X., Su X.D., Goodyer C., Leblanc A.C. Alternatively spliced caspase-6B isoform inhibits the activation of caspase-6A. J. Biol. Chem., 2010, vol. 285, no. 42, pp. 31974–31984. doi: 10.1074/jbc.M110.152744

34. Lee Y., Rio D.C. Mechanisms and regulation of alternative pre-mRNA splicing. Annu. Rev. Biochem., 2015, vol. 84, pp. 291–323. doi: 10.1146/annurev-biochem-060614-034316

35. Luftig M., Yasui T., Soni V., Kang M.S., Jacobson N., Cahir-McFarland E., Seed B., Kieff E. Epstein–Barr virus latent infection membrane protein 1 TRAF-binding site induces NIK/IKK alpha-dependent noncanonical NF-kappaB activation. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2004, vol. 101, no. 1. pp. 141–146. doi: 10.1073/pnas.2237183100

36. McCarthy D. J., Smyth G. K. Testing significance relative to a fold-change threshold is a TREAT. Bioinformatics, 2009, vol. 25, no. 6, pp. 765–771. doi: 10.1093/bioinformatics/btp053

37. Nandakumar A., Uwatoko F., Yamamoto M., Tomita K., Majima H.J., Akiba S., Koriyama C. Radiation-induced Epstein– Barr virus reactivation in gastric cancer cells with latent EBV infection. Tumor Biol., 2017, vol. 39, no. 7: 1010428317717718. doi: 10.1177/1010428317717718

38. Paschos K., Smith P., Anderton E. Middeldorp J.M., White R.E., Allday M.J. Epstein–Barr virus latency in B cells leads to epigenetic repression and CpG methylation of the tumor suppressor gene bim. PLoS Pathog., 2009, vol. 5, no. 6: 1000492. doi: 10.1371/journal.ppat.1000492

39. Portis T., Longnecker R. Epstein–Barr virus (EBV) LMP2A mediates B-lymphocyte survival through constitutive activation of the Ras/PI3K/AKT pathway. Oncogene, 2004, vol. 23, no. 53, pp. 8619–8628. doi: 10.1038/sj.onc.1207905

40. Pratt Z.L., Zhang J., Sugden B. Simultaneously induce and inhibit oncogene of Epstein–Barr virus can the latent membrane protein 1 (LMP1) apoptosis in B cells. J. Virol., 2012, vol. 86, no. 8, pp. 4380–4393. doi: 10.1128/JVI.06966-11

41. Schneider F., Neugebauer J., Griese J., Liefold N., Kutz H., Brise ñ o C., Kieser A. The viral oncoprotein LMP1 exploits TRADD for signaling by masking its apoptotic activity. PLoS Biol., 2008. vol. 6, no. 1: 8. doi: 10.1371/journal.pbio.0060008

42. Schröfelbauer B., Polley S., Behar M. Ghosh G., Hoffmann A. NEMO ensures signaling specificity of the pleiotropic IKKβ by directing its kinase activity toward IκBα. Mol. Cell, 2012, vol. 47, pp. 111–121. doi: 10.1016/j.molcel.2012.04.020

43. Schwerk C., Schulze-Osthoff K. Regulation of apoptosis by alternative pre-mRNA splicing. Mol. Cell, 2005, vol. 19, pp. 1–13. doi: 10.1016/j.molcel.2005.05.026

44. Shinozaki-Ushiku A., Kunita A., Isogai M., Hibiya T., Ushiku T., Takada K., Fukayama M. Profiling of virus-encoded micro-RNAs in Epstein–Barr virus-associated gastric carcinoma and their roles in gastric carcinogenesis. J. Virol., 2015, vol. 89, no. 10, pp. 5581–5591. doi: 10.1128/JVI.03639-14

45. Snow A.L., Lambert S. L., Natkunam Y., Esquivel C.O., Krams S.M., Martinez O.M. EBV can protect latently infected B cell lymphomas from death receptor-induced apoptosis. J. Immunol., 2006, vol. 177, pp. 3283–3293. doi: 10.4049/jimmunol.177.5.3283

46. Solntsev L.A., Starikova V.D., Sakharnov N.A., Knyazev D.I., Utkin O.V. Strategy of probe selection for studying mRNAs that participate in receptor-mediated apoptosis signaling. Mol. Biol., 2015, vol. 49, no. 3, pp. 457–465. doi: 10.7868/S0026898415030167

47. Steelman L.S., Pohnert S.C., Shelton J.G., Franklin R.A., Bertrand F.E., McCubrey J.A. JAK/STAT, Raf/MEK/ERK, PI3K/ Akt and BCR-ABL in cell cycle progression and leukemogenesis. Leukemia, 2004, vol. 18, no. 2, pp. 189–218. doi: 10.1038/sj.leu.2403241

48. Tepper C.G., Seldin M.F. Modulation of caspase-8 and FLICE-inhibitory protein expression as a potential mechanism of Epstein–Barr virus tumorigenesis in Burkitt’s lymphoma. Blood, 1999, vol. 94, no. 5, pp. 1727–1737.

49. Williams E.J., Embleton N.D., Clark J.E., Bythell M., Ward Platt M.P., Berrington J.E. Viral infections: contributions to late fetal death, stillbirth, and infant death. J. Pediatr., 2013, vol. 163, no. 2, pp. 424–428. doi: 10.1016/j.jpeds.2013.02.004

50. Wu Z., Aryee M.J. Subset quantile normalization using negative control features. J. Comput. Biol., 2010, vol. 17, no. 10, pp. 1385–1395. doi: 10.1089/cmb.2010.0049

51. Yachie A. Cytologic analysis of Epstein–Barr virus-associated T/Natural killer-cell lymphoproliferative diseases. Front. Pediatr., 2018, vol. 6: 327. doi: 10.3389/fped.2018.00327

52. Zhu D.M., Shi J., Liu S., Liu Y., Zheng D. HIV infection enhances TRAIL-induced cell death in macrophage by down-regulating decoy receptor expression and generation of reactive oxygen species. PLoS One, 2011, vol. 6, no. 4: e18291. doi: 10.1371/journal.pone.0018291

53. Zimber-Strobl U., Strobl L.J. EBNA2 and Notch signaling in Epstein–Barr virus mediated immortalization of B lymphocytes. Semin. Cancer Biol., 2001, vol. 11, no. 6, pp. 423–434. doi: 10.1006/scbi.2001.0409

54. Zuo J., Thomas W.A., Haigh T.A., Fitzsimmons L., Long H.M., Hislop A.D., Taylor G.S., Rowe M. Epstein–Barr virus evades CD4+ T cell responses in lytic cycle through BZLF1-mediated down-regulation of CD74 and the cooperation of vBcl-2. PLoS Pathog., 2011, vol. 7, no. 12: 1002455. doi: 10.1371/journal.ppat.1002455


Дополнительные файлы

1. Метаданные
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (17KB)    
Метаданные
2. Титульный лист
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (16KB)    
Метаданные
3. Резюме
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (20KB)    
Метаданные
4. Таблица 1
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (17KB)    
Метаданные
5. Таблица 2
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (17KB)    
Метаданные
6. Таблица 3
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (16KB)    
Метаданные
7. Таблица 4
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (16KB)    
Метаданные
8. подписи авторов
Тема
Тип Прочее
Посмотреть (255KB)    
Метаданные
9. литература
Тема
Тип Прочее
Скачать (34KB)    
Метаданные
10. Таблица 1 (исправленная)
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (17KB)    
Метаданные
11. Таблица 2 (исправленная)
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (17KB)    
Метаданные
12. Таблица 3 (исправленная)
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (16KB)    
Метаданные
13. Таблица 4 (исправленная)
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (16KB)    
Метаданные

Для цитирования:


Сахарнов Н.А., Уткин О.В., Филатова Е.Н., Князев Д.И., Преснякова Н.Б. Анализ экспрессии мРНК основных участников сигналинга апоптоза и выживания в лейкоцитах крови детей с острым ВЭБ-инфекционным мононуклеозом. Инфекция и иммунитет. 2019;9(5-6):723-734. https://doi.org/10.15789/2220-7619-2019-5-6-723-734

For citation:


Sakharnov N.A., Utkin O.V., Filatova E.N., Knyazev D.I., Presnyakova N.B. Apoptosis- and survival-related gene mRNA profile in peripheral blood leukocytes in children with acute EBV infectious mononucleosis. Russian Journal of Infection and Immunity. 2019;9(5-6):723-734. (In Russ.) https://doi.org/10.15789/2220-7619-2019-5-6-723-734

Просмотров: 269


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2220-7619 (Print)
ISSN 2313-7398 (Online)